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déprotonés (pKa=5.5). Les contres ions positifs de l’électrolyte vont neutraliser la paroi. Ces
cations nombreux, attirés par le pôle négatif, entraînent avec eux le liquide : le flux
électroosmotique (Audrey, 2017).
Lorsque le capillaire est rempli d’un électrolyte tampon, les cations du tampon sont attirés
vers les charges négatives de la surface du capillaire, formant ainsi une double couche
électrique, caractérisée par un potentiel de surface ou potentiel zéta (ζ) (Audrey, 2017).
Le flux électroosmotique est fonction des propriétés du tampon (nature, force ionique, pH
etviscosité) (Audrey, 2017).
Electrophorèse sur papier et acétate de cellulose
Les bandes d'acétate de cellulose sont fragiles, mais elles limitent la diffusion des molécules
à séparer. La révélation des protéines se fait également par une réaction colorimétrique
(rouge de ponceau par exemple). Cette technique, peu résolutive, permet de séparer
grossièrement des groupes de protéines. Elle est peu coûteuse et permet une analyse rapide
des protéines sériques (Mohamed N, 2010).
Application d’électrophorèse des protéines chez les poissons
Dans le cadre d’une étude collaborative, et dans le but de tester et d’étudier la fiabilité et la
pertinence des méthodes d’électrophorèse sur gel de polyacrylamide SDS-PAGE et IEF, neuf
laboratoire ont choisit d’étudier l’identification d’espèces de poissons cuits par
électrophorèse des protéines sarcoplasmiques (Food Chemistry 67 (1999)).
Figure II.18 : résultat de l’électrophorèse
par SDS-PAGE et le niveau de similarité
entre les échantillons crus et cuits
Figure II.17 : résultat de l’électrophorèse par
IEF et le niveau de similarité entre les
échantillons crus et cuits
déprotonés (pKa=5.5). Les contres ions positifs de l’électrolyte vont neutraliser la paroi. Ces
cations nombreux, attirés par le pôle négatif, entraînent avec eux le liquide : le flux
électroosmotique (Audrey, 2017).
Lorsque le capillaire est rempli d’un électrolyte tampon, les cations du tampon sont attirés
vers les charges négatives de la surface du capillaire, formant ainsi une double couche
électrique, caractérisée par un potentiel de surface ou potentiel zéta (ζ) (Audrey, 2017).
Le flux électroosmotique est fonction des propriétés du tampon (nature, force ionique, pH
etviscosité) (Audrey, 2017).
Electrophorèse sur papier et acétate de cellulose
Les bandes d'acétate de cellulose sont fragiles, mais elles limitent la diffusion des molécules
à séparer. La révélation des protéines se fait également par une réaction colorimétrique
(rouge de ponceau par exemple). Cette technique, peu résolutive, permet de séparer
grossièrement des groupes de protéines. Elle est peu coûteuse et permet une analyse rapide
des protéines sériques (Mohamed N, 2010).
Application d’électrophorèse des protéines chez les poissons
Dans le cadre d’une étude collaborative, et dans le but de tester et d’étudier la fiabilité et la
pertinence des méthodes d’électrophorèse sur gel de polyacrylamide SDS-PAGE et IEF, neuf
laboratoire ont choisit d’étudier l’identification d’espèces de poissons cuits par
électrophorèse des protéines sarcoplasmiques (Food Chemistry 67 (1999)).
Figure II.18 : résultat de l’électrophorèse
par SDS-PAGE et le niveau de similarité
entre les échantillons crus et cuits
Figure II.17 : résultat de l’électrophorèse par
IEF et le niveau de similarité entre les
échantillons crus et cuits