Annexe 7
Les variations morphologiques induites sont à l’origine de confusions taxonomiques et des
erreurs de diagnoses génériques ou spécifiques peuvent survenir ce qui a valu des descriptions
d’une même espèce sous des identités différentes voire des descriptions erronées de nouvelles
espèces comme ce fut le cas pour Bothriocephalus acheilognathi.
Dans certains cas, les spécimens récoltés sont directement placés dans un mélange d’Acide
Acétique Glacial (2 à 3 gouttes) + Glycérine (50 ml) + éthanol (200 ml). Cette préparation
permet la relaxation des parasites (Monogènes, Digènes, Crustacés) et rend leur tégument
transparent pour une meilleure observation des organes internes. Autre avantage de cette
méthode, les parasites conservent leur élasticité et sont donc facilement manipulables.
Après un court séjour (1h à 2h) dans ce mélange, les parasites frais (Protozoaires, Monogènes,
Digènes, Crustacés) sont isolés entre lame et lamelle sans compression. La lamelle est scellée
hermétiquement à sa périphérie avec du vernis à ongle.
Cette procédure permet de conserver des montages entiers pour une période d’une année sans
que les tissus ne soient altérés. Le renouvellement du scellement étant obligatoire dès le premier
mois de conservation. L’étude des parasites s’est faite selon deux étapes d’observations :
Macroscopique de façon à orienter l’identification,
Microscopique afin de discerner les particularités morphologiques d’intérêt
taxonomique permettant une diagnose du genre ou de l’espèce.
Les parasites prélevés sont conservés dans des piluliers à fermeture hermétique contenant soit du
formaldéhyde à 10 % ou de l’éthanol à 70°. L’inconvénient du formaldéhyde est sa lente
diffusion dans les tissus (Bucke, 1972) mais il est préférable si la collection de parasites est
stockée pour une longue durée en raison de son faible degré d’évaporation par rapport à
l’éthanol.
Chaque flacon est muni d’une étiquette où sont mentionnés :
Date et le Lieu de l’échantillonnage,
Numéro d’ordre de l’échantillon ;
Espèce hôte, organe parasité ;
Diagnose du parasite (Genre, espèce).
7. Montage entier des Helminthes
Selon le fixateur utilisé, le protocole de coloration et de montage, est conforme aux indications
de Meyer et Olsen (1980) :
Après fixation dans le formaldéhyde à 10 % ou l’alcool 70°, les parasites sont rincés dans l’eau
distillée durant 1 à 2 h.
Les variations morphologiques induites sont à l’origine de confusions taxonomiques et des
erreurs de diagnoses génériques ou spécifiques peuvent survenir ce qui a valu des descriptions
d’une même espèce sous des identités différentes voire des descriptions erronées de nouvelles
espèces comme ce fut le cas pour Bothriocephalus acheilognathi.
Dans certains cas, les spécimens récoltés sont directement placés dans un mélange d’Acide
Acétique Glacial (2 à 3 gouttes) + Glycérine (50 ml) + éthanol (200 ml). Cette préparation
permet la relaxation des parasites (Monogènes, Digènes, Crustacés) et rend leur tégument
transparent pour une meilleure observation des organes internes. Autre avantage de cette
méthode, les parasites conservent leur élasticité et sont donc facilement manipulables.
Après un court séjour (1h à 2h) dans ce mélange, les parasites frais (Protozoaires, Monogènes,
Digènes, Crustacés) sont isolés entre lame et lamelle sans compression. La lamelle est scellée
hermétiquement à sa périphérie avec du vernis à ongle.
Cette procédure permet de conserver des montages entiers pour une période d’une année sans
que les tissus ne soient altérés. Le renouvellement du scellement étant obligatoire dès le premier
mois de conservation. L’étude des parasites s’est faite selon deux étapes d’observations :
Macroscopique de façon à orienter l’identification,
Microscopique afin de discerner les particularités morphologiques d’intérêt
taxonomique permettant une diagnose du genre ou de l’espèce.
Les parasites prélevés sont conservés dans des piluliers à fermeture hermétique contenant soit du
formaldéhyde à 10 % ou de l’éthanol à 70°. L’inconvénient du formaldéhyde est sa lente
diffusion dans les tissus (Bucke, 1972) mais il est préférable si la collection de parasites est
stockée pour une longue durée en raison de son faible degré d’évaporation par rapport à
l’éthanol.
Chaque flacon est muni d’une étiquette où sont mentionnés :
Date et le Lieu de l’échantillonnage,
Numéro d’ordre de l’échantillon ;
Espèce hôte, organe parasité ;
Diagnose du parasite (Genre, espèce).
7. Montage entier des Helminthes
Selon le fixateur utilisé, le protocole de coloration et de montage, est conforme aux indications
de Meyer et Olsen (1980) :
Après fixation dans le formaldéhyde à 10 % ou l’alcool 70°, les parasites sont rincés dans l’eau
distillée durant 1 à 2 h.