Annexe 8
8. Coloration des Monogènes, Digènes, Cestodes et Acanthocéphales
- Carmin boracique,
- Hématoxyline de Delafield
- Hématoxyline d’Erhlish
- Hématoxyline de Harris
- Bleu de méthylène.
La décoloration est obtenue par passage des spécimens (30 secondes à 1 minute) dans l’alcool à
70° additionné de deux ou trois gouttes d’acide chlorhydrique pur.
La déshydratation est effectuée dans une série de dilution d’éthanol à 75° ; 80° ;
90° puis 100° durant 12 à 24 Heures pour chacune des étapes.
L’éclaircissement des tissus est obtenu par le passage des parasites dans un bain de quelques
minutes de Méthyle Salicylate. L’utilisation du xylène et du toluène exige des manipulations
sous hôte aspirante vu les effets néfastes des vapeurs de ces produits.
Les parasites sont montés entre lame et lamelle, sans compression, dans du baume de Canada.
Pour les Cestodes Caryophyllidés, les parties antérieure et postérieure sont isolées, colorées
(hématoxyline d’Erhlisch ou de Delafield) puis montées entre lame et lamelle dans du baume de
Canada pour servir à la diagnose générique et spécifique. La partie moyenne, après coloration
(rouge Carmin ou hématoxyline) puis inclusion dans de la paraffine, est sectionnée au microtome
(coupes histologiques de 3 à 6 microns).
Les coupes sont montées entre lame et lamelle pour la diagnose de la famille
(Fig.09) basée sur la position des vitellaria et des testicules par rapport aux muscles
longitudinaux internes (Schmidt, 1986 ; Mackiewicz,1994). Le Bleu de Méthylène avec une
contre coloration finale à l’éosine a été utilisé pour quelques montages entiers.
Figure annexe 09: Elément de diagnose des Caryophyllidés (Meddour , 1988)
(a) Montage entier de diagnose générique et spécifique
(b) Coupes histologiques transversales (diagnose de la famille)
8. Coloration des Monogènes, Digènes, Cestodes et Acanthocéphales
- Carmin boracique,
- Hématoxyline de Delafield
- Hématoxyline d’Erhlish
- Hématoxyline de Harris
- Bleu de méthylène.
La décoloration est obtenue par passage des spécimens (30 secondes à 1 minute) dans l’alcool à
70° additionné de deux ou trois gouttes d’acide chlorhydrique pur.
La déshydratation est effectuée dans une série de dilution d’éthanol à 75° ; 80° ;
90° puis 100° durant 12 à 24 Heures pour chacune des étapes.
L’éclaircissement des tissus est obtenu par le passage des parasites dans un bain de quelques
minutes de Méthyle Salicylate. L’utilisation du xylène et du toluène exige des manipulations
sous hôte aspirante vu les effets néfastes des vapeurs de ces produits.
Les parasites sont montés entre lame et lamelle, sans compression, dans du baume de Canada.
Pour les Cestodes Caryophyllidés, les parties antérieure et postérieure sont isolées, colorées
(hématoxyline d’Erhlisch ou de Delafield) puis montées entre lame et lamelle dans du baume de
Canada pour servir à la diagnose générique et spécifique. La partie moyenne, après coloration
(rouge Carmin ou hématoxyline) puis inclusion dans de la paraffine, est sectionnée au microtome
(coupes histologiques de 3 à 6 microns).
Les coupes sont montées entre lame et lamelle pour la diagnose de la famille
(Fig.09) basée sur la position des vitellaria et des testicules par rapport aux muscles
longitudinaux internes (Schmidt, 1986 ; Mackiewicz,1994). Le Bleu de Méthylène avec une
contre coloration finale à l’éosine a été utilisé pour quelques montages entiers.
Figure annexe 09: Elément de diagnose des Caryophyllidés (Meddour , 1988)
(a) Montage entier de diagnose générique et spécifique
(b) Coupes histologiques transversales (diagnose de la famille)