MATERIELS ET METHODES
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de l’acidification du milieu, due à la dégradation du saccharose. La présence de thiosulfate et
de citrate de fer III, permet également d’observer la production d’H₂S, avec des colonies à
centre noir indiquant H₂S positif et des colonies sans centre noir indiquant H₂S négatif.
Tableau XIV. Résultats de l’identification présomptive sur le milieu TCBS
Colonies jaunes
Colonies vertes
Petites colonies jaunes Petites colonies vertes
Vibrions saccharose +
V. cholerae
V. alginolyticus
V. fluvialis
V. furnissii
V. metschnikovii
Vibrions saccharose –
V. vulnificus
V. parahaemolyticus
V. mimicus
Escherichia coli
Klebsiella
Shigella
P. aeruginosa
Enterococcus faecalis
Pour la confirmation des Vibrions : Après incubation et dans le cas d’obtention de colonies
caractéristiques suspectes, ces derniers devront être repiquées par triple strie sur le même milieu
sélectif (TCBS), afin d’avoir des colonies bien isolées. Les colonies isolées obtenues seront,
ensuite, repiquées sur GN, et les cultures pures obtenues après incubation seront soumises à des
observations à l’état frais, une coloration de Gram et d’éventuels tests biochimiques (catalase,
oxydase, …).
6. Stabilité du produit et durée de conservation de l'aliment
Afin d’évaluer la stabilité du produit et sa durée de conservation, nous avons effectué un
test de stabilité, l’un sans procédé thermique préalable et l’autre après traitement thermique
(tyndallisation) en se basant sur l’évaluation, des caractéristiques organoleptiques du produit
(aspect, texture, odeur et couleur).
6.1. Stabilité du produit, sans procédé thermique préalable
Nous avons placé le produit dans des bocaux stériles fermés, où la température a varié selon
les conditions climatiques naturelles pendant les 42 jours d'expérience.
6.2. Stabilité du produit, après tyndallisation
Principe de la méthode
La tyndallisation consiste en une série de trois chauffages de 1 heure à 70-80 °C, séparées
par un intervalle de 24 h à température ambiante, ce qui permet la germination et la destruction
des spores sans l'emploi d'une température excessive. Cette méthode est utilisée pour les
milieux fragiles et thermosensibles, qui ne peuvent être stérilisés à de hautes températures
(Guiraud, 2003).
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de l’acidification du milieu, due à la dégradation du saccharose. La présence de thiosulfate et
de citrate de fer III, permet également d’observer la production d’H₂S, avec des colonies à
centre noir indiquant H₂S positif et des colonies sans centre noir indiquant H₂S négatif.
Tableau XIV. Résultats de l’identification présomptive sur le milieu TCBS
Colonies jaunes
Colonies vertes
Petites colonies jaunes Petites colonies vertes
Vibrions saccharose +
V. cholerae
V. alginolyticus
V. fluvialis
V. furnissii
V. metschnikovii
Vibrions saccharose –
V. vulnificus
V. parahaemolyticus
V. mimicus
Escherichia coli
Klebsiella
Shigella
P. aeruginosa
Enterococcus faecalis
Pour la confirmation des Vibrions : Après incubation et dans le cas d’obtention de colonies
caractéristiques suspectes, ces derniers devront être repiquées par triple strie sur le même milieu
sélectif (TCBS), afin d’avoir des colonies bien isolées. Les colonies isolées obtenues seront,
ensuite, repiquées sur GN, et les cultures pures obtenues après incubation seront soumises à des
observations à l’état frais, une coloration de Gram et d’éventuels tests biochimiques (catalase,
oxydase, …).
6. Stabilité du produit et durée de conservation de l'aliment
Afin d’évaluer la stabilité du produit et sa durée de conservation, nous avons effectué un
test de stabilité, l’un sans procédé thermique préalable et l’autre après traitement thermique
(tyndallisation) en se basant sur l’évaluation, des caractéristiques organoleptiques du produit
(aspect, texture, odeur et couleur).
6.1. Stabilité du produit, sans procédé thermique préalable
Nous avons placé le produit dans des bocaux stériles fermés, où la température a varié selon
les conditions climatiques naturelles pendant les 42 jours d'expérience.
6.2. Stabilité du produit, après tyndallisation
Principe de la méthode
La tyndallisation consiste en une série de trois chauffages de 1 heure à 70-80 °C, séparées
par un intervalle de 24 h à température ambiante, ce qui permet la germination et la destruction
des spores sans l'emploi d'une température excessive. Cette méthode est utilisée pour les
milieux fragiles et thermosensibles, qui ne peuvent être stérilisés à de hautes températures
(Guiraud, 2003).