MATÉRIEL PARTICULAIRE
généralement que la méthode est précise à ± 15% (Yentsch et Menzel.
1963; Neveux, 1976). Cette précision ne tient pas compte de la présence
éventuelle de chlorophyllide a qui est dosée avec la chlorophylle a.
2.3. LIMITE DE DÉTECTION
La limite de détection dépend des éléments composant l’appareillage de
mesure. Avec le matériel décrit dans le présent protocole, elle est d’environ 1
à 3 pg. T1 dans l’extrait acétonique.
3. PRÉLÈVEMENT, ÉCHANTILLONNAGE
Se référer au chapitre XV, paragraphe 3.
Une pré-filtration sur grosses mailles n’est pas toujours souhaitable
car elle peut entraîner des sous-estimations de la chlorophylle a planctonique.
4. CONSERVATION
Se référer au chapitre XV, paragraphe 4.
5. APPAREILLAGE
5.1. DISPOSITIF DE FILTRATION
La filtration est effectuée sous vide léger. Les appareils de filtration
avec support-filtre en verre fritté et pince de serrage semblent préférables
(chapitre XII).
5.2. TUBES DE MESURE
De l extraction jusqu’ à la lecture de fluorescence incluse, il est conseillé
d utiliser un seul tube pour chacun des échantillons. Ce tube en verre doit
pouvoir se placer dans la centrifugeuse puis dans le porte-échantillon du
fluorimètre. par exemple : tube sovirel (réf. 4611-51), avec bouchon en bakélite et rondelle téflon (réf. 13). On doit travailler avec des tubes provenant
d un même lot. Effectuer une sélection des tubes à l’aide d’une solution de
pigments : la réponse pour l'ensemble des tubes sélectionnés ne doit pas s’écarter à ±2 % de la valeur moyenne.
5.3. BROYEUR OU DÉSINTÉGRATEUR
Se référer au chapitre XV, paragraphe 5.4.
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généralement que la méthode est précise à ± 15% (Yentsch et Menzel.
1963; Neveux, 1976). Cette précision ne tient pas compte de la présence
éventuelle de chlorophyllide a qui est dosée avec la chlorophylle a.
2.3. LIMITE DE DÉTECTION
La limite de détection dépend des éléments composant l’appareillage de
mesure. Avec le matériel décrit dans le présent protocole, elle est d’environ 1
à 3 pg. T1 dans l’extrait acétonique.
3. PRÉLÈVEMENT, ÉCHANTILLONNAGE
Se référer au chapitre XV, paragraphe 3.
Une pré-filtration sur grosses mailles n’est pas toujours souhaitable
car elle peut entraîner des sous-estimations de la chlorophylle a planctonique.
4. CONSERVATION
Se référer au chapitre XV, paragraphe 4.
5. APPAREILLAGE
5.1. DISPOSITIF DE FILTRATION
La filtration est effectuée sous vide léger. Les appareils de filtration
avec support-filtre en verre fritté et pince de serrage semblent préférables
(chapitre XII).
5.2. TUBES DE MESURE
De l extraction jusqu’ à la lecture de fluorescence incluse, il est conseillé
d utiliser un seul tube pour chacun des échantillons. Ce tube en verre doit
pouvoir se placer dans la centrifugeuse puis dans le porte-échantillon du
fluorimètre. par exemple : tube sovirel (réf. 4611-51), avec bouchon en bakélite et rondelle téflon (réf. 13). On doit travailler avec des tubes provenant
d un même lot. Effectuer une sélection des tubes à l’aide d’une solution de
pigments : la réponse pour l'ensemble des tubes sélectionnés ne doit pas s’écarter à ±2 % de la valeur moyenne.
5.3. BROYEUR OU DÉSINTÉGRATEUR
Se référer au chapitre XV, paragraphe 5.4.
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