Contrôle microbiologique des produits cosmétiques
425
En fonction des exigences demandées, une identification biochimique sur une galerie API bioMérieux® SA peut être réalisée (cf. chapitre 8 précité, paragraphe 5.2.).
Conclure sur la présence ou l’absence de Ps. aeruginosa dans l’échantillon
analysé.
4.3.3. Staphylococcus aureus
Pour la présentation de ce germe : cf. deuxième partie, chapitre 9
« Staphylococcus, Micrococcus et Qx-Micrococcus », paragraphe 3.1.1.
Le protocole de détection et de dénombrement de Staphylococcus aureus est
présenté en se fondant sur un milieu de culture spécifique de ce germe telle la
gélose de Baird-Parker.
4.3.3.1. Composition chimique et mode d’action du milieu de culture
La composition chimique et le mode d’action de la gélose de Baird-Parker
bioMérieux® SA sont donnés dans le chapitre 9 précité, paragraphe 5.2.1.
L’utilisation de la gélose de Baird-Parker pour la détection de Staphylococcus
aureus est recommandée :
- par l’industrie cosmétique européenne (1997) ;
- dans la nouvelle norme NF ISO 22718 (2006) pour la recherche de Staphylococcus aureus dans les produits cosmétiques.
Ce milieu de culture sera sans doute déclaré conforme à la norme, information
ne pouvant pas encore figurer dans la fiche technique du fabricant puisqu’elle
vient d’être homologuée.
4.3.3.2. Ensemencement et incubation du milieu
Après enrichissement de l’échantillon préparé sur le bouillon Eugon LI 100
(cf. supra, paragraphe 4.1.2.) pendant au moins 20 heures (et jusqu à 72 heures)
à 32,5 ± 2,5 °C, ensemencer des géloses de Baird-Parker en surface par étalement de 0,1 mL (par exemple) de bouillon.
Incuber les boîtes à 32,5 ± 2,5 °C pendant 24 à 48 heures maximum.
43.3.3. Lecture et interprétation du milieu
Les colonies de 0,5 à 1 mm de diamètre à 24 heures, noires, brillantes, convexes avec halo d’éclaircissement correspondent à des staphylocoques à coagulase
positive. Il s’agit le plus souvent de Staphylococcus aureus et parfois de
S. saprophyticus...
Les colonies d’aspect différent pouvant se développer sur ce milieu sont présentées dans le tableau 120 du chapitre 9 précité.
433.4. Confirmation et dénombrement
Confirmer les colonies présomptives de S. aureus en vérifiant que celles-ci
proviennent de souches pures de cocci Gram+.
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En fonction des exigences demandées, une identification biochimique sur une galerie API bioMérieux® SA peut être réalisée (cf. chapitre 8 précité, paragraphe 5.2.).
Conclure sur la présence ou l’absence de Ps. aeruginosa dans l’échantillon
analysé.
4.3.3. Staphylococcus aureus
Pour la présentation de ce germe : cf. deuxième partie, chapitre 9
« Staphylococcus, Micrococcus et Qx-Micrococcus », paragraphe 3.1.1.
Le protocole de détection et de dénombrement de Staphylococcus aureus est
présenté en se fondant sur un milieu de culture spécifique de ce germe telle la
gélose de Baird-Parker.
4.3.3.1. Composition chimique et mode d’action du milieu de culture
La composition chimique et le mode d’action de la gélose de Baird-Parker
bioMérieux® SA sont donnés dans le chapitre 9 précité, paragraphe 5.2.1.
L’utilisation de la gélose de Baird-Parker pour la détection de Staphylococcus
aureus est recommandée :
- par l’industrie cosmétique européenne (1997) ;
- dans la nouvelle norme NF ISO 22718 (2006) pour la recherche de Staphylococcus aureus dans les produits cosmétiques.
Ce milieu de culture sera sans doute déclaré conforme à la norme, information
ne pouvant pas encore figurer dans la fiche technique du fabricant puisqu’elle
vient d’être homologuée.
4.3.3.2. Ensemencement et incubation du milieu
Après enrichissement de l’échantillon préparé sur le bouillon Eugon LI 100
(cf. supra, paragraphe 4.1.2.) pendant au moins 20 heures (et jusqu à 72 heures)
à 32,5 ± 2,5 °C, ensemencer des géloses de Baird-Parker en surface par étalement de 0,1 mL (par exemple) de bouillon.
Incuber les boîtes à 32,5 ± 2,5 °C pendant 24 à 48 heures maximum.
43.3.3. Lecture et interprétation du milieu
Les colonies de 0,5 à 1 mm de diamètre à 24 heures, noires, brillantes, convexes avec halo d’éclaircissement correspondent à des staphylocoques à coagulase
positive. Il s’agit le plus souvent de Staphylococcus aureus et parfois de
S. saprophyticus...
Les colonies d’aspect différent pouvant se développer sur ce milieu sont présentées dans le tableau 120 du chapitre 9 précité.
433.4. Confirmation et dénombrement
Confirmer les colonies présomptives de S. aureus en vérifiant que celles-ci
proviennent de souches pures de cocci Gram+.