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Microbiologie pratique pour le laboratoire d’analyses ou de contrôle sanitaire
Les précisions taxonomiques sur le genre Micrococcus ne sont pas indiquées
dans la fiche technique du milieu (2003). Il faut donc préciser que ce milieu
assure la différenciation du genre Staphylococcus des genres Micrococcus,
Kocuria, Kytococcus, Dermacoccus, autrefois classés dans le seul genre Micrococcus (cf. annexe générale 3 « Classification phylogénique des bactéries » et
deuxième partie, chapitre 9 « Staphylococcus, Micrococcus et cx-Micrococcus »,
paragraphe 6.2.2.).
2.1.2.1. Composition chimique du milieu de culture
La composition chimique de ce milieu de culture en g/L d’eau distillée est:
Dihydrogénophosphate d’ammonium..................................................
1
Chlorure de potassium.......................................................................... 0,2
Sulfate de magnésium .......................................................................... 0,2
Extrait de levure....................................................................................
1
Glucose................................................................................................... 10
Agar.......................................................................................................... 3,2
Solution de pourpre de bromocrésol à 0,2 %.....................................
7,5 mL
Ce milieu est disponible en tube étroit (6 mL par tube) prêt à l’emploi.
2.1.2.2. Ensemencement et incubation du milieu
Prendre un tube de MEVAG Staphylococcus prêt à l’emploi et le régénérer au
bain-marie bouillant, puis le refroidir immédiatement dans l’eau froide.
Ensemencer le milieu par piqûre centrale à partir d’une culture pure et fraîche
prélevée sur milieu gélosé. Plus précisément effectuer un mouvement de va-etvient au tond du tube, afin d'apporter plus de bactéries, puis retirer l’anse verticalement pour limiter l’aération du milieu.
Incuber 18 à 24 heures à 37 °C.
2.1.2.3. Lecture et interprétation du milieu
Le pourpre de bromocrésol, indicateur de pH est jaune en milieu acide et violet
en milieu basique (milieu non ensemencé coloré en violet). Lorsque le glucose
est utilisé par les bactéries, les acides produits le font virer au jaune en surface
(s il y a oxydation) ou en profondeur (s’il y a fermentation).
Observer les tubes et interpréter les résultats suivant les indications données
dans le tableau 55.
Microbiologie pratique pour le laboratoire d’analyses ou de contrôle sanitaire
Les précisions taxonomiques sur le genre Micrococcus ne sont pas indiquées
dans la fiche technique du milieu (2003). Il faut donc préciser que ce milieu
assure la différenciation du genre Staphylococcus des genres Micrococcus,
Kocuria, Kytococcus, Dermacoccus, autrefois classés dans le seul genre Micrococcus (cf. annexe générale 3 « Classification phylogénique des bactéries » et
deuxième partie, chapitre 9 « Staphylococcus, Micrococcus et cx-Micrococcus »,
paragraphe 6.2.2.).
2.1.2.1. Composition chimique du milieu de culture
La composition chimique de ce milieu de culture en g/L d’eau distillée est:
Dihydrogénophosphate d’ammonium..................................................
1
Chlorure de potassium.......................................................................... 0,2
Sulfate de magnésium .......................................................................... 0,2
Extrait de levure....................................................................................
1
Glucose................................................................................................... 10
Agar.......................................................................................................... 3,2
Solution de pourpre de bromocrésol à 0,2 %.....................................
7,5 mL
Ce milieu est disponible en tube étroit (6 mL par tube) prêt à l’emploi.
2.1.2.2. Ensemencement et incubation du milieu
Prendre un tube de MEVAG Staphylococcus prêt à l’emploi et le régénérer au
bain-marie bouillant, puis le refroidir immédiatement dans l’eau froide.
Ensemencer le milieu par piqûre centrale à partir d’une culture pure et fraîche
prélevée sur milieu gélosé. Plus précisément effectuer un mouvement de va-etvient au tond du tube, afin d'apporter plus de bactéries, puis retirer l’anse verticalement pour limiter l’aération du milieu.
Incuber 18 à 24 heures à 37 °C.
2.1.2.3. Lecture et interprétation du milieu
Le pourpre de bromocrésol, indicateur de pH est jaune en milieu acide et violet
en milieu basique (milieu non ensemencé coloré en violet). Lorsque le glucose
est utilisé par les bactéries, les acides produits le font virer au jaune en surface
(s il y a oxydation) ou en profondeur (s’il y a fermentation).
Observer les tubes et interpréter les résultats suivant les indications données
dans le tableau 55.