Souche
Test
V(l)
V (2)
V (3)
V (4)
V (5)
V (6)
V (7)
0/129
+
(100)
+(100)
+(100)
,(100)
+
+
+
ONPG
V (84)
V (31)
V (50)
,(19)
+
+
-
ADH
V (80)
-(0)
-(0)
V (60)
+
-
—
LDC
-(0)
,(100)
,(100)
-(7)
-
+
ODC
-(0)
*(93)
*(100)
-(0)
-
-
CIT
-(0)
-(0)
-(0)
-(0)
-
—
H 2 S
-(0)
-(0)
-(0)
-(0)
-
—
URE
-(0)
-(0)
-(0)
-(0)
-
—
TDA
-(0)
-(0)
-(0)
-(0)
-
-
-
IND
*(90)
,(100)
*(100)
V (00)
-
-
-
VP
V (12)
V (16)
V (50)
V (24)
-
—
GEL
V (58)
V (62)
V (67)
-(4)
+
-
—
GLU
*(100)
,(100)
,(100)
,(100)
+
+
+
MAN
*(97)
,(100)
*(100)
V (79)
+
+
+
INO
*(100)
-(0)
-(0)
■(0)
-
-
—
SOR
V (21)
V (16)
-(0)
V (13)
+
—
RHA
-(3)
-(0)
-(0)
-(0)
-
—
SAC
V (84)
-(0)
,(100)
V (66)
-
—
—
MEL
-(0)
-(0)
-(0)
-(0)
-
—
AMY
V (77)
V (16)
V (33)
V (25)
■
+
+
ARA
V (34)
V (23)
V (33)
V (13)
-
-
OX
,(100)
,(100)
,(100)
*(100)
+
+
+
Croissance à 35°C
V (81)
,(100)
*(100)
*(91)
Croissance à 42°C
-(2)
V (15)
,(100)
-(6)
Croissance avec 0% NaCl
V (19)
-(0)
-(0)
V (16)
Croissance avec 3% NaCl
,(100)
,(100)
+(100)
,(100)
Croissance avec 10 % NaCl
-(7)
-(8)
V (67)
V (25)
Tableau 2 : Caractéristiques de 110 souches de vibrions isolés et des souches de référence (le nombre entre
parenthèse indique le pourcentage des souches avec réaction positive).
v (1) = V. anguillarum (59 souches); V (2) = V. parahaemolyticus (13 souches); V (3) = V. alginolyticus
(6souches) ; V (4) = Autres vibrions (32 souches); V (5) = V. anguillarum NCMB 1291 ; V (6) = V. fisheri
NCMB 1274; V (7) = V. natriegens NCMB 857
La plupart des colonies jaunes (sacc+) du TCBS agar était des V. anguillarum, d’autres
des V. alginolyticus ou “intermédiaires”. Ces dernières ont été appelées “autres vibrions”
parce qu’ils n’étaient pas facilement assimilables à des espèces déterminées. Seulement 13
souches (sacc-) étaient des V. parahaemolyticus typiques.
Le tableau 3 présente la sensibilité aux substances antibactériennes des 59 souches de V.
anguillarum. Sur la base de la largeur des zones d’inhibition de croissance autour du
disque, on a pu diviser les souches en trois catégories ; sensibles, intermédiaires ou
résistantes. Toutes les souches se sont avérées sensibles au chloramphénicol qui a produit
des halos d’inhibition les plus grands, en accord avec ce qui avait été déjà observé lors des
recherches précédentes (Bruni et al., 1983). La tétracycline s’est également montrée
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V (31)
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LDC
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ODC
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V (12)
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V (50)
V (24)
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GEL
V (58)
V (62)
V (67)
-(4)
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GLU
*(100)
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MAN
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V (79)
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INO
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SOR
V (21)
V (16)
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V (13)
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RHA
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SAC
V (84)
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V (66)
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MEL
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AMY
V (77)
V (16)
V (33)
V (25)
■
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ARA
V (34)
V (23)
V (33)
V (13)
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OX
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Croissance à 35°C
V (81)
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Croissance à 42°C
-(2)
V (15)
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Croissance avec 0% NaCl
V (19)
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V (16)
Croissance avec 3% NaCl
,(100)
,(100)
+(100)
,(100)
Croissance avec 10 % NaCl
-(7)
-(8)
V (67)
V (25)
Tableau 2 : Caractéristiques de 110 souches de vibrions isolés et des souches de référence (le nombre entre
parenthèse indique le pourcentage des souches avec réaction positive).
v (1) = V. anguillarum (59 souches); V (2) = V. parahaemolyticus (13 souches); V (3) = V. alginolyticus
(6souches) ; V (4) = Autres vibrions (32 souches); V (5) = V. anguillarum NCMB 1291 ; V (6) = V. fisheri
NCMB 1274; V (7) = V. natriegens NCMB 857
La plupart des colonies jaunes (sacc+) du TCBS agar était des V. anguillarum, d’autres
des V. alginolyticus ou “intermédiaires”. Ces dernières ont été appelées “autres vibrions”
parce qu’ils n’étaient pas facilement assimilables à des espèces déterminées. Seulement 13
souches (sacc-) étaient des V. parahaemolyticus typiques.
Le tableau 3 présente la sensibilité aux substances antibactériennes des 59 souches de V.
anguillarum. Sur la base de la largeur des zones d’inhibition de croissance autour du
disque, on a pu diviser les souches en trois catégories ; sensibles, intermédiaires ou
résistantes. Toutes les souches se sont avérées sensibles au chloramphénicol qui a produit
des halos d’inhibition les plus grands, en accord avec ce qui avait été déjà observé lors des
recherches précédentes (Bruni et al., 1983). La tétracycline s’est également montrée
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