Echantillon
Date
T°C
Marine agar
TCBS 24°C
TCBS 35°C
N° des souches
isolées
Eau d’alimentation
29.11.82
16,8
3,4 x 10 4
6,0 x 10 3
0
5
Eau d’alimentation
30.11.82
17,0
9,0 x 10 3
2,5 x 10 2
2,4 x 10 2
13
Eau d’alimentation
02.02.83
14,8
2,9 x 10 4
2,5 x 10 2
3
24
Eau d’alimentation
02.02.83
14,6
2,5 x 10 4
1,1 x 10 2
5
13
Eau d’alimentation
08.09.83
21,0
8,1 x 10 4
2,2 x 10 3
2,2 x 10 3
2
Eau d'alimentation
08.09.83
23,9
2,8 x KM
6.9 x 10 2
7,5 x KF
17
Eau des bassins
09.12.83
16,0
1,7x10 5
-
3,0 x 10 3
5
Eau des bassins
13.01.82
13,8
8,2 x KM
-
64
23
Eau des bassins
05.05.83
16,0
3,3 x 10 4
2,4 x 10 4
.
7
Eau des bassins
07.09.83
20,5
8,4 xl0 5
3,0 x 10 3
1,9 x 10 4
19
Nourriture
18.02.83
-
-
8,5 x KM (*)
-
27
(*) Le résultat se réfère à 1 gramme de nourriture homogénéisée.
Tableau 1 : Charges (/100 ml) en hétérotrophes totaux et en vibrions présomptifs dans les échantillons
examinés.
Les caractères suivants ont également été étudiés : lysine décarboxylase, ornithine decarboxylase, arginine dihydrolase, culture sur eau peptonée avec NaCl 10% (selon Sakazaki), fermentation du saccharose avec NaCl 3%.
La distinction entre ces trois biotypes établis par Sakazaki et al. ( 1963) est effectuée sur la
base de trois caractères : culture avec NaCl 10%, fermentation du saccharose et production d’écétoïne.
La mesure de la sensibilité à 9 antibiotiques parmi les plus communs (bacitracine,
chloramphénicol, colistine, érythromycine, novobiocine, pénicilline, polymixine B, streptomycine et tetracycline) et au sulfamide sulfatiazole (Difco) a été réalisée par la technique
de l’antibiogramme sur milieu gélosé. Chaque souche a été répliquée en bouillon de
culture (Marine Broth 2216-Difco), puis incubée 24 h à 24°C. La culture a été diluée en
eau de mer stérile jusqu’à une densité optique 0.10 (à 625 nm). Cette suspension a été
utilisée pour inoculer en surface le milieu gélosé (Marine Agar 2216-Difco). Le degré de
résistance a été établi selon l’échelle des zones d’inhibition établie par les laboratoires
Difco.
RÉSULTATS
Le tableau 1 présente les dates de prélèvement, les températures, les nombres de bactéries
hétérotrophes et de vibrions halophiles ainsi que le nombres des souches de “vibrions
présomptifs” isolées de l’eau d’alimentation, de l’eau des bassins et de la nourriture.
Les dénombrements les plus élevés, comme on pouvait s’y attendre, ont été trouvés dans
les échantillons d’eau des bassins d’élevage et, en particulier lorsque la température était la
plus élevée (20,5°C) le 7/9/1983. La quantité de vibrions halophiles par rapport aux
hétérotrophes totaux était élevée. Des tests préliminaires, effectués selon les indications
fournies par Barrow (1973) (sensibilité au 0/129, réaction de Gram, croissance à diverses
concentrations de NaC 1, mobilité, test à l’oxydase) sur 156 souches isolées par le TCBS et
considérés comme des “vibrions présomptifs” ont confirmé l’appartenance au genre
Vibrio de 110 souches. Les caractéristiques biochimiques et culturales de ces 110 vibrions
par comparaison avec trois souches de vibrions fournies par la “National Collection of
Marine Bacteria” de Aberdeen (Écosse) ont été reportées dans le tableau 2.
477
Date
T°C
Marine agar
TCBS 24°C
TCBS 35°C
N° des souches
isolées
Eau d’alimentation
29.11.82
16,8
3,4 x 10 4
6,0 x 10 3
0
5
Eau d’alimentation
30.11.82
17,0
9,0 x 10 3
2,5 x 10 2
2,4 x 10 2
13
Eau d’alimentation
02.02.83
14,8
2,9 x 10 4
2,5 x 10 2
3
24
Eau d’alimentation
02.02.83
14,6
2,5 x 10 4
1,1 x 10 2
5
13
Eau d’alimentation
08.09.83
21,0
8,1 x 10 4
2,2 x 10 3
2,2 x 10 3
2
Eau d'alimentation
08.09.83
23,9
2,8 x KM
6.9 x 10 2
7,5 x KF
17
Eau des bassins
09.12.83
16,0
1,7x10 5
-
3,0 x 10 3
5
Eau des bassins
13.01.82
13,8
8,2 x KM
-
64
23
Eau des bassins
05.05.83
16,0
3,3 x 10 4
2,4 x 10 4
.
7
Eau des bassins
07.09.83
20,5
8,4 xl0 5
3,0 x 10 3
1,9 x 10 4
19
Nourriture
18.02.83
-
-
8,5 x KM (*)
-
27
(*) Le résultat se réfère à 1 gramme de nourriture homogénéisée.
Tableau 1 : Charges (/100 ml) en hétérotrophes totaux et en vibrions présomptifs dans les échantillons
examinés.
Les caractères suivants ont également été étudiés : lysine décarboxylase, ornithine decarboxylase, arginine dihydrolase, culture sur eau peptonée avec NaCl 10% (selon Sakazaki), fermentation du saccharose avec NaCl 3%.
La distinction entre ces trois biotypes établis par Sakazaki et al. ( 1963) est effectuée sur la
base de trois caractères : culture avec NaCl 10%, fermentation du saccharose et production d’écétoïne.
La mesure de la sensibilité à 9 antibiotiques parmi les plus communs (bacitracine,
chloramphénicol, colistine, érythromycine, novobiocine, pénicilline, polymixine B, streptomycine et tetracycline) et au sulfamide sulfatiazole (Difco) a été réalisée par la technique
de l’antibiogramme sur milieu gélosé. Chaque souche a été répliquée en bouillon de
culture (Marine Broth 2216-Difco), puis incubée 24 h à 24°C. La culture a été diluée en
eau de mer stérile jusqu’à une densité optique 0.10 (à 625 nm). Cette suspension a été
utilisée pour inoculer en surface le milieu gélosé (Marine Agar 2216-Difco). Le degré de
résistance a été établi selon l’échelle des zones d’inhibition établie par les laboratoires
Difco.
RÉSULTATS
Le tableau 1 présente les dates de prélèvement, les températures, les nombres de bactéries
hétérotrophes et de vibrions halophiles ainsi que le nombres des souches de “vibrions
présomptifs” isolées de l’eau d’alimentation, de l’eau des bassins et de la nourriture.
Les dénombrements les plus élevés, comme on pouvait s’y attendre, ont été trouvés dans
les échantillons d’eau des bassins d’élevage et, en particulier lorsque la température était la
plus élevée (20,5°C) le 7/9/1983. La quantité de vibrions halophiles par rapport aux
hétérotrophes totaux était élevée. Des tests préliminaires, effectués selon les indications
fournies par Barrow (1973) (sensibilité au 0/129, réaction de Gram, croissance à diverses
concentrations de NaC 1, mobilité, test à l’oxydase) sur 156 souches isolées par le TCBS et
considérés comme des “vibrions présomptifs” ont confirmé l’appartenance au genre
Vibrio de 110 souches. Les caractéristiques biochimiques et culturales de ces 110 vibrions
par comparaison avec trois souches de vibrions fournies par la “National Collection of
Marine Bacteria” de Aberdeen (Écosse) ont été reportées dans le tableau 2.
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