sographique de Messina, il a été constaté une importante mortalité de certains sujets ;
mortalité attribuée à une “vibriose” provoquée par le V. anguillarum, qui était systématiquement isolé chez les poissons présentant des signes évidents de maladie (Faranda et al.,
1982). Ces observations ont conduit à enquêter sur la présence de vibrions halophiles dans
l’eau d’alimentation, dans l’eau des bassins et dans le hachis du poisson utilisé comme
aliment pour les poissons en élevage, au cours de l’expérience.
MATÉRIELS ET MÉTHODES
Conditions d’élevage :
La station étudiée, située au cap Peloro (Messina) possède plusieurs bassins d’élevage
alimentés par de l’eau de mer. Les détails sont présentés dans le travail de Faranda et al.,
(1983).
Échantillons :
Six échantillons d’eau d’alimentation, quatre échantillons d’eau prélevés dans les bacs, un
échantillon de nourriture destinée aux poissons d’élevage (hachis congelé de poissons),
ont été étudiés. Les résultats de l’utilisation de ce type de nourriture sur la croissance des
espèces d’élevage ont déjà été publiés par Faranda et al., (1984).
Méthodes d’analyse :
L’étude des bactéries hétérotrophes a été réalisée sur le milieu Marine Agar 2216 (Difco)
par l’étalement en surface de 0,1 ml d’échantillon. Le dénombrement est effectué après 7
jours d’incubation à 24°C.
Pour les vibrions halophiles, les échantillons d’eau ont été filtrés sur membranes Millipore
(0.45 µm de porosité) ; les membranes déposées sur le TCBS agar (Difco) ont été incubées
à 24° et 35°C respectivement pendant 48 et 24 heures. Ces deux températures ont été
utilisées pour une différenciation préliminaire des vibrions qui se développent aussi à
37°C (surtout le V. parahaemolyticus et le V. alginolyticus).
L’échantillon de nourriture (hachis de poisson) a été homogénéisé avec de l’eau peptonée
à 3% de NaCl et, après dilution, a été inoculé sur des milieux identiques à ceux utilisés
pour l’eau.
Les colonies suspectes, jaunes et vertes, isolées sur le TCBS, ont été soumises à des
examens d’identification au moyen du système API 20 E (Maugeri et al., 1983) et de
méthodes traditionnelles. L’origine et le nombre des souches étudiées sont reportés dans
le tableau I.
Les souches qui étaient négatives pour les caractères suivants :
- fermentation du lactose sur milieu de Kliger avec NaCl 3% ;
- production d’H 2 S sur TCBS ;
- production de gaz fermenté sur milieu de Kliger avec NaCl 3% ;
- coloration de Gram ;
- culture sur eau peptonée avec NaCl 0% ;
et qui étaient positives pour les caractères suivants :
- fermentation du glucose sur milieu de Kliger avec NaCl 3% ;
- aspect en bacille ou virgule ;
- sensibilité au composé vibriostatique 0/129 ;
- culture sur eau peptonée avec NaCl 3% ;
ont été considérées comme vibrions halophiles.
mortalité attribuée à une “vibriose” provoquée par le V. anguillarum, qui était systématiquement isolé chez les poissons présentant des signes évidents de maladie (Faranda et al.,
1982). Ces observations ont conduit à enquêter sur la présence de vibrions halophiles dans
l’eau d’alimentation, dans l’eau des bassins et dans le hachis du poisson utilisé comme
aliment pour les poissons en élevage, au cours de l’expérience.
MATÉRIELS ET MÉTHODES
Conditions d’élevage :
La station étudiée, située au cap Peloro (Messina) possède plusieurs bassins d’élevage
alimentés par de l’eau de mer. Les détails sont présentés dans le travail de Faranda et al.,
(1983).
Échantillons :
Six échantillons d’eau d’alimentation, quatre échantillons d’eau prélevés dans les bacs, un
échantillon de nourriture destinée aux poissons d’élevage (hachis congelé de poissons),
ont été étudiés. Les résultats de l’utilisation de ce type de nourriture sur la croissance des
espèces d’élevage ont déjà été publiés par Faranda et al., (1984).
Méthodes d’analyse :
L’étude des bactéries hétérotrophes a été réalisée sur le milieu Marine Agar 2216 (Difco)
par l’étalement en surface de 0,1 ml d’échantillon. Le dénombrement est effectué après 7
jours d’incubation à 24°C.
Pour les vibrions halophiles, les échantillons d’eau ont été filtrés sur membranes Millipore
(0.45 µm de porosité) ; les membranes déposées sur le TCBS agar (Difco) ont été incubées
à 24° et 35°C respectivement pendant 48 et 24 heures. Ces deux températures ont été
utilisées pour une différenciation préliminaire des vibrions qui se développent aussi à
37°C (surtout le V. parahaemolyticus et le V. alginolyticus).
L’échantillon de nourriture (hachis de poisson) a été homogénéisé avec de l’eau peptonée
à 3% de NaCl et, après dilution, a été inoculé sur des milieux identiques à ceux utilisés
pour l’eau.
Les colonies suspectes, jaunes et vertes, isolées sur le TCBS, ont été soumises à des
examens d’identification au moyen du système API 20 E (Maugeri et al., 1983) et de
méthodes traditionnelles. L’origine et le nombre des souches étudiées sont reportés dans
le tableau I.
Les souches qui étaient négatives pour les caractères suivants :
- fermentation du lactose sur milieu de Kliger avec NaCl 3% ;
- production d’H 2 S sur TCBS ;
- production de gaz fermenté sur milieu de Kliger avec NaCl 3% ;
- coloration de Gram ;
- culture sur eau peptonée avec NaCl 0% ;
et qui étaient positives pour les caractères suivants :
- fermentation du glucose sur milieu de Kliger avec NaCl 3% ;
- aspect en bacille ou virgule ;
- sensibilité au composé vibriostatique 0/129 ;
- culture sur eau peptonée avec NaCl 3% ;
ont été considérées comme vibrions halophiles.