Chapitre II : Techniques d’analyse
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aussi être prises de convulsions, faire des mouvements désorganisés et se coucher sur le côté
avant de mourir.
Toxicité :
La limite de détection de ce test est de 40 µg d’acide domoïque par gramme de chair. Le
seuil de détection étant deux fois plus élevé que le seuil réglementaire (20 µg/g).
d. Méthode d’analyse des toxines neurologique (IFREMER, 2001) :
Actuellement, le seul test reconnu pour la détermination de la toxicité des coquillages en
vue de leur mise sur le marché est un bioessai sur souris.
Protocole :
Extraire les toxines contenues dans un broyat de chair totale de 100 g par de
l’éther diéthylique ;
le résidu sec obtenu après évaporation de l’éther est dissous dans 10ml d’huile
de coton de manière à injecter l’équivalent de 10 g de tissus à chaque souris en
injectant 1 ml.
Lecture :
Les souris sont observées pendant six heures en continu puis chaque heure
entre 6 et 15 h (Dickey et al, 1999 ; Apha, 1985).
En présence de toxines, les souris présentent les symptômes suivants : immédiatement
après l’injection IP, les souris montrent des signes d’irritabilité, suivis par une
paralysie des pattes arrière, une sévère dyspnée et des convulsions avant la mort par
paralysie respiratoire (Baden, 1989, cité par Ishida et al, 1995).
e.Méthode d’analyse des ciguatoxines :
Ce bioessai fut l’un des premiers utilisé avec succès par Banner et al (1961) pour mettre
en évidence la présence de ciguatoxines dans les tissus de poissons ciguatériques. Il nécessite
la préparation d’un extrait brut lipophile et son injection intrapéritonéale (IP) aux souris. La
méthode a été décrite par Yasumoto et al (1984). Elle faisait suite à la description exhaustive
de ce bioessai par Hoffman et al (1983). Elle a ensuite été actualisée selon un protocole
toxicologique précis applicable à 50, 100 ou 200 g de poisson de toxicité inconnue avec
utilisation respective de 2, 6 ou 12 souris (Vernoux, 1994). Du point de vue de l’hygiène
alimentaire, et par souci de simplicité et d’économie, c’est le test utilisant 50 g de chair de
poisson qui est préféré.
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aussi être prises de convulsions, faire des mouvements désorganisés et se coucher sur le côté
avant de mourir.
Toxicité :
La limite de détection de ce test est de 40 µg d’acide domoïque par gramme de chair. Le
seuil de détection étant deux fois plus élevé que le seuil réglementaire (20 µg/g).
d. Méthode d’analyse des toxines neurologique (IFREMER, 2001) :
Actuellement, le seul test reconnu pour la détermination de la toxicité des coquillages en
vue de leur mise sur le marché est un bioessai sur souris.
Protocole :
Extraire les toxines contenues dans un broyat de chair totale de 100 g par de
l’éther diéthylique ;
le résidu sec obtenu après évaporation de l’éther est dissous dans 10ml d’huile
de coton de manière à injecter l’équivalent de 10 g de tissus à chaque souris en
injectant 1 ml.
Lecture :
Les souris sont observées pendant six heures en continu puis chaque heure
entre 6 et 15 h (Dickey et al, 1999 ; Apha, 1985).
En présence de toxines, les souris présentent les symptômes suivants : immédiatement
après l’injection IP, les souris montrent des signes d’irritabilité, suivis par une
paralysie des pattes arrière, une sévère dyspnée et des convulsions avant la mort par
paralysie respiratoire (Baden, 1989, cité par Ishida et al, 1995).
e.Méthode d’analyse des ciguatoxines :
Ce bioessai fut l’un des premiers utilisé avec succès par Banner et al (1961) pour mettre
en évidence la présence de ciguatoxines dans les tissus de poissons ciguatériques. Il nécessite
la préparation d’un extrait brut lipophile et son injection intrapéritonéale (IP) aux souris. La
méthode a été décrite par Yasumoto et al (1984). Elle faisait suite à la description exhaustive
de ce bioessai par Hoffman et al (1983). Elle a ensuite été actualisée selon un protocole
toxicologique précis applicable à 50, 100 ou 200 g de poisson de toxicité inconnue avec
utilisation respective de 2, 6 ou 12 souris (Vernoux, 1994). Du point de vue de l’hygiène
alimentaire, et par souci de simplicité et d’économie, c’est le test utilisant 50 g de chair de
poisson qui est préféré.