• Pratiquer un essai témoin en dosant l’oxygène dissous dans l’eau de dilution
(eau permutée ensemencée ou eau de rivière) et traiter deux fioles remplie
de cette eau comme indiqué ci-dessous.
• Doser l’oxygène résiduel.
• Au cours de cet essai-témoi ; la consommation d’oxygène doit se situer
entre 0.5 et 1.5g/l.
Dans le cas contraire, l’ensemencement par l’eau de dilution n’est pas
convenable et il est nécessaire d’en modifier la préparation.
d. Calculs et expressions des résultats.
Soit :
D 0 : Teneur en oxygène (mg/l) de l’eau de dilution au début de l’essai.
D 5 : Teneur moyenne en oxygène (mg/l) de l’eau de dilution au bout de
cinq (05) jours d’incubation.
T 0 : Teneur en oxygène (mg/l) de l’une de dilutions de l’échantillon au
début de l’essai.
T 5 : Teneur en oxygène (mg/l) de l’une des dilutions de l’échantillon au
bout de cinq (05) jours d’incubation
F : Facteur de dilution tel que :
0.4 T 0 < T 0 – T 5 < 0.6 T 0
La demande biochimique en oxygène exprimée en milligrammes d’oxygène par
litre est égale :
DBO 5 = F (T 0 – T 5 ) – (F-1) (D 0 – D 5 )
III.3. Etude bactériologique.
III.3.1. Prélèvements.
Un examen bactériologique doit être effectué sur un échantillon
correctement prélevé, dans des flacons stérile, selon un mode opératoire précis
évitant toute contamination
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