MATERIEL ET METHODES
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Pour la caractérisation morphologique, chaque individu est prélevé à l’aide d’une
pipette puis placé sur une lame, sous une loupe binoculaire équipée d’une caméra et d’un
système informatique : Optika version Pro.
Pour l’étude morphométrique, les mesures doivent être prises sur des individus élevés
dans des conditions standard d’élevage. Selon Hontoria and Amat (1992b), les paramètres
environnementaux peuvent affecter la morphométrie des individus d’Artemia. Les nauplii
(éclosion dans une salinité de 35 PSU et une température de 28 ± 1°C, lumière et aération
constantes) sont élevés jusqu’à l’apparition des premiers signes adultes.
Un échantillonnage aléatoire simple a été réalisé, pour chaque population sur des
adultes où les individus prélevés ont été anesthésiés dans une boîte de pétrie pendant quelques
minutes, remplie d’eau de mer à laquelle un volume de 5ml d’eau douce saturée de
chloroforme a été ajouté.
À l'aide d’une pipette, chaque individu est prélevé et ensuite placé sur une lame et à
l’aide d’un microscope optique équipé d’un micromètre oculaire, la lecture biométrique a été
réalisée.
Les mesures morphologiques sont les suivantes (Figure 46) :
- Longueur totale (LT) ;
- Longueur de l’abdomen (LA) ;
- Longueur de la fourche caudale (LF) ;
- Largeur de l’utérus chez la femelle ou du segment génital chez le mâle (lO ou lSge) ;
- Largeur du troisième segment de l’abdomen (lA) ;
- Largeur de la tête (lte) ;
- Longueur de l’antennule LAnt) ;
- Diamètre de l’œil (DO) ;
- Distance entre les yeux (DiY).
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Pour la caractérisation morphologique, chaque individu est prélevé à l’aide d’une
pipette puis placé sur une lame, sous une loupe binoculaire équipée d’une caméra et d’un
système informatique : Optika version Pro.
Pour l’étude morphométrique, les mesures doivent être prises sur des individus élevés
dans des conditions standard d’élevage. Selon Hontoria and Amat (1992b), les paramètres
environnementaux peuvent affecter la morphométrie des individus d’Artemia. Les nauplii
(éclosion dans une salinité de 35 PSU et une température de 28 ± 1°C, lumière et aération
constantes) sont élevés jusqu’à l’apparition des premiers signes adultes.
Un échantillonnage aléatoire simple a été réalisé, pour chaque population sur des
adultes où les individus prélevés ont été anesthésiés dans une boîte de pétrie pendant quelques
minutes, remplie d’eau de mer à laquelle un volume de 5ml d’eau douce saturée de
chloroforme a été ajouté.
À l'aide d’une pipette, chaque individu est prélevé et ensuite placé sur une lame et à
l’aide d’un microscope optique équipé d’un micromètre oculaire, la lecture biométrique a été
réalisée.
Les mesures morphologiques sont les suivantes (Figure 46) :
- Longueur totale (LT) ;
- Longueur de l’abdomen (LA) ;
- Longueur de la fourche caudale (LF) ;
- Largeur de l’utérus chez la femelle ou du segment génital chez le mâle (lO ou lSge) ;
- Largeur du troisième segment de l’abdomen (lA) ;
- Largeur de la tête (lte) ;
- Longueur de l’antennule LAnt) ;
- Diamètre de l’œil (DO) ;
- Distance entre les yeux (DiY).
