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GUIDE DES ALGUES DES MERS D’EUROPE
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:
Fig. 1
Matériel nécessaire pour la préparation des échantillons d’herbier.
Récolte et mise en herbier
Les échantillons doivent être fraîchement récoltés sur le terrain. Ils ne
doivent pas être cuéillis négligemment mais au contraire toujours soigneu—
sement prélevés avec leur base, celle-ci étant souvent un caractère fondamental de reconnaissance (cas des Cystoseira).
Les échantillons frais se conservent bien dans des sacs de plastique simplement humectés. Il est possible de les maintenir ainsi dans le bas d’un
réfrigérateur pendant quelques jours.
_
Les échantillons une fois séparés et identifiés sont disposés dans une
cuvette plate contenant de l’eau de mer (ou de l’eau à laquelle on aura ajouté
une poignée de gros sel). Une plaque de verre ou de plastique à demi immergée permet l’étalement de l’échantillon (fig. 1). On glisse à sa surface une
feuille de bristol ou de papier qu’il est très important de mouiller complè—
tement. On dispose l’échantillon en s’efforçant, à l’aide de pinceaux et de
pinces
de lui conserver un aspect aussi caractéristique que possible (désépa1ssrr si nécessaire en détachant quelques rameaux). On retire doucement
le
bristol portant l’échantillon en égouttant le tout que l’on place sur un
lit
de papier journal ou de papier buvard. On recouvre d’un morceau de
torle propre, de voile de tergal ou de bas nylon et l’on place une nouvelle
couche de papier absorbant, préparant la pose de l’échantillon suivant. A
la fin de l’opération le tout est recouvert d’une planche perforée facilitant
le séchage, et d’un poids (10 kg maximum).
_Il
est important de ne pas écraser les spécimens, un échantillon d’herb1er bien conservé devant toujours par la suite pouvoir être réhydraté et
sa cytologie étudiée au microscope.
Il est également important de préparer les Algues par individus séparés
GUIDE DES ALGUES DES MERS D’EUROPE
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Fig. 1
Matériel nécessaire pour la préparation des échantillons d’herbier.
Récolte et mise en herbier
Les échantillons doivent être fraîchement récoltés sur le terrain. Ils ne
doivent pas être cuéillis négligemment mais au contraire toujours soigneu—
sement prélevés avec leur base, celle-ci étant souvent un caractère fondamental de reconnaissance (cas des Cystoseira).
Les échantillons frais se conservent bien dans des sacs de plastique simplement humectés. Il est possible de les maintenir ainsi dans le bas d’un
réfrigérateur pendant quelques jours.
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Les échantillons une fois séparés et identifiés sont disposés dans une
cuvette plate contenant de l’eau de mer (ou de l’eau à laquelle on aura ajouté
une poignée de gros sel). Une plaque de verre ou de plastique à demi immergée permet l’étalement de l’échantillon (fig. 1). On glisse à sa surface une
feuille de bristol ou de papier qu’il est très important de mouiller complè—
tement. On dispose l’échantillon en s’efforçant, à l’aide de pinceaux et de
pinces
de lui conserver un aspect aussi caractéristique que possible (désépa1ssrr si nécessaire en détachant quelques rameaux). On retire doucement
le
bristol portant l’échantillon en égouttant le tout que l’on place sur un
lit
de papier journal ou de papier buvard. On recouvre d’un morceau de
torle propre, de voile de tergal ou de bas nylon et l’on place une nouvelle
couche de papier absorbant, préparant la pose de l’échantillon suivant. A
la fin de l’opération le tout est recouvert d’une planche perforée facilitant
le séchage, et d’un poids (10 kg maximum).
_Il
est important de ne pas écraser les spécimens, un échantillon d’herb1er bien conservé devant toujours par la suite pouvoir être réhydraté et
sa cytologie étudiée au microscope.
Il est également important de préparer les Algues par individus séparés