Matériel et Méthodes
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2.3.2. Éclairement
L’éclairement diurne des cultures est naturel, sans exposition directe aux rayons du soleil.
Quant à la nuit, aucune source lumineuse n’a été mise en place.
2.3.3. Température
Durant le 1
er ensemencement, la température de la culture a été contrôlée à l'aide d'une
résistance avec un thermostat (RS-200W ; 220-240v ; 50-60 Hz) introduite dans un aquarium
formant un bain-marie pour assurer une répartition homogène de la température (Figure II.6).
La température optimale est atteinte en veillant à augmenter régulièrement la température de
2°C par jour (32 C°) pour éviter les chocs thermiques.
Durant le 2
ème ensemencement, deux résistances de même type ont été introduites dans
chaque aquarium de culture contenant le M1 (Figure II.7) et le M2 (Figure II.8),
respectivement.
2.3.4. Hygiène et Maintenance
De bonnes pratiques d'hygiène ont été suivies (ne pas toucher le produit avec les mains, de
travailler loin du sol, avec des instruments et récipients en inox ou verre, désinfectés et utilisés
exclusivement à la culture de la spiruline), comme recommandées par Ait-Ouamer &
Bouaziz (2021).
Le nettoyage du matériel de culture et la stérilisation du matériel de laboratoire dans une
étuve, avant chaque nouvel ensemencement, est indispensable pour éviter l’introduction des
impuretés ou la contamination de la culture. Afin d’éviter la pénétration des insectes, nous
avons couvert la culture avec une moustiquaire.
2.4. Suivi du développement algal
2.4.1. Mesure des paramètres physico-chimiques
La surveillance quotidienne du dispositif expérimental en veillant au bon fonctionnement
des pompes et des agitateurs, et aux mesures de température, de pH et de conductivité, a permis
de suivre minutieusement les cultures (Figure II.10) et d'éviter les pannes ou pertes inopinées :
Le pH à l’aide d’un pH-mètre ;
La température avec un Thermomètre ;
La conductivité avec un conductimètre pour mesurer la salinité du milieu.
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2.3.2. Éclairement
L’éclairement diurne des cultures est naturel, sans exposition directe aux rayons du soleil.
Quant à la nuit, aucune source lumineuse n’a été mise en place.
2.3.3. Température
Durant le 1
er ensemencement, la température de la culture a été contrôlée à l'aide d'une
résistance avec un thermostat (RS-200W ; 220-240v ; 50-60 Hz) introduite dans un aquarium
formant un bain-marie pour assurer une répartition homogène de la température (Figure II.6).
La température optimale est atteinte en veillant à augmenter régulièrement la température de
2°C par jour (32 C°) pour éviter les chocs thermiques.
Durant le 2
ème ensemencement, deux résistances de même type ont été introduites dans
chaque aquarium de culture contenant le M1 (Figure II.7) et le M2 (Figure II.8),
respectivement.
2.3.4. Hygiène et Maintenance
De bonnes pratiques d'hygiène ont été suivies (ne pas toucher le produit avec les mains, de
travailler loin du sol, avec des instruments et récipients en inox ou verre, désinfectés et utilisés
exclusivement à la culture de la spiruline), comme recommandées par Ait-Ouamer &
Bouaziz (2021).
Le nettoyage du matériel de culture et la stérilisation du matériel de laboratoire dans une
étuve, avant chaque nouvel ensemencement, est indispensable pour éviter l’introduction des
impuretés ou la contamination de la culture. Afin d’éviter la pénétration des insectes, nous
avons couvert la culture avec une moustiquaire.
2.4. Suivi du développement algal
2.4.1. Mesure des paramètres physico-chimiques
La surveillance quotidienne du dispositif expérimental en veillant au bon fonctionnement
des pompes et des agitateurs, et aux mesures de température, de pH et de conductivité, a permis
de suivre minutieusement les cultures (Figure II.10) et d'éviter les pannes ou pertes inopinées :
Le pH à l’aide d’un pH-mètre ;
La température avec un Thermomètre ;
La conductivité avec un conductimètre pour mesurer la salinité du milieu.