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B IOLOGIE CELLULAIRE
La mise au point de systèmes in vitro assurant des
fonctions biologiques complexes constitue une
étape indispensable dans l’analyse des mécanismes moléculaires permettant leur réalisation.
Enfin, la sélection et le triage de catégories cellulaires homogènes, au sein d’une population hétérogène, sont possibles grâce à la cytométrie en
flux, qui analyse toute caractéristique biologique
identifiable et mesurable par fluorescence.
Les réponses sont disponibles sur Internet à l’adresse www.dunod.com.
1. Décrire les objectifs et les méthodes du fractionnement chimique.
2. Quels sont les principaux types de chromatographie ?
3. Quelles différences importantes existent entre l’électrophorèse native et l’électrophorèse dénaturante ?
4. Quel est le principe d’un protocole de centrifugation différentielle ? Quels en sont les avantages et
les inconvénients ?
5. Qu’appelle-t-on «centrifugation en gradient » ? combien existe-t-il de types différents de cette
méthode ?
6. Décrire les objectifs et les méthodes générales de la cytochimie.
7. Même question pour l’immunocytochimie.
8. Même question pour l’hybridation in situ.
9. Décrire les objectifs et les principales étapes d’un protocole de fractionnement cellulaire.
10. Quels sont les différents types de cultures de cellules animales ?
11. Quelle est la différence entre un isotope lourd et un isotope radioactif, et avec quelles méthodes
et/ou outils peut-on détecter ces deux types d’isotopes ?
12. Donner quelques exemples d’isotopes radioactifs particulièrement utilisés en Biologie et en
Physiologie Cellulaires ?
13. En quoi consiste une expérience de pulse-chase et quel est son intérêt ?
14. Expliquer l’intérêt des mutants pour l’étude des phénomènes biologiques et en donner quelques
exemples classiques en Biologie Cellulaire.
15. Quels sont les principes et les utilisations de l’autoradiographie ?
16. Décrire les objectifs et les méthodes générales de la cytoenzymologie.
17. En quoi consiste la technique de visualisation in vivo des protéines nommée «marquage à la GFP» ?
18. Qu’appelle-t-on «sonde fluorescente d’activité métabolique » ?
19. Dans quelles conditions réalise-t-on un test de complémentation fonctionnelle, et quelles réponses
permet-il d’obtenir ?
20. En quoi consiste la technique nommée «cytométrie en flux continu » ?
QROC
B IOLOGIE CELLULAIRE
La mise au point de systèmes in vitro assurant des
fonctions biologiques complexes constitue une
étape indispensable dans l’analyse des mécanismes moléculaires permettant leur réalisation.
Enfin, la sélection et le triage de catégories cellulaires homogènes, au sein d’une population hétérogène, sont possibles grâce à la cytométrie en
flux, qui analyse toute caractéristique biologique
identifiable et mesurable par fluorescence.
Les réponses sont disponibles sur Internet à l’adresse www.dunod.com.
1. Décrire les objectifs et les méthodes du fractionnement chimique.
2. Quels sont les principaux types de chromatographie ?
3. Quelles différences importantes existent entre l’électrophorèse native et l’électrophorèse dénaturante ?
4. Quel est le principe d’un protocole de centrifugation différentielle ? Quels en sont les avantages et
les inconvénients ?
5. Qu’appelle-t-on «centrifugation en gradient » ? combien existe-t-il de types différents de cette
méthode ?
6. Décrire les objectifs et les méthodes générales de la cytochimie.
7. Même question pour l’immunocytochimie.
8. Même question pour l’hybridation in situ.
9. Décrire les objectifs et les principales étapes d’un protocole de fractionnement cellulaire.
10. Quels sont les différents types de cultures de cellules animales ?
11. Quelle est la différence entre un isotope lourd et un isotope radioactif, et avec quelles méthodes
et/ou outils peut-on détecter ces deux types d’isotopes ?
12. Donner quelques exemples d’isotopes radioactifs particulièrement utilisés en Biologie et en
Physiologie Cellulaires ?
13. En quoi consiste une expérience de pulse-chase et quel est son intérêt ?
14. Expliquer l’intérêt des mutants pour l’étude des phénomènes biologiques et en donner quelques
exemples classiques en Biologie Cellulaire.
15. Quels sont les principes et les utilisations de l’autoradiographie ?
16. Décrire les objectifs et les méthodes générales de la cytoenzymologie.
17. En quoi consiste la technique de visualisation in vivo des protéines nommée «marquage à la GFP» ?
18. Qu’appelle-t-on «sonde fluorescente d’activité métabolique » ?
19. Dans quelles conditions réalise-t-on un test de complémentation fonctionnelle, et quelles réponses
permet-il d’obtenir ?
20. En quoi consiste la technique nommée «cytométrie en flux continu » ?
QROC