Chapitre II : Matériels et méthodes
20
Cognac, à raison d’environ 8 gouttes par un demi-litre d’échantillon. Cette fixation présente
plusieurs avantages :
Les Flagellés conservent en majorité leurs flagelles.
Les cellules phytoplanctoniques prennent une coloration brune claire ce qui facilite
l’observation microscopique. (Rossi, 2008)
Le Lugol permet une bonne sédimentation du phytoplancton. (Dadi, 2002)
Les échantillons sont gardés par la suite dans une glacière et en obscurité afin d’éviter la
détérioration du phytoplancton. (Dadi, 2002)
B. Conservation des échantillons destinés à l’analyse des sels nutritifs :
Selon (Lampert, 2001), les échantillons destinés à l’analyse des sels nutritifs doivent être
congelés immédiatement à –20°C si l’analyse est programmée pour une date ultérieure. Ainsi les
échantillons sont gardés au niveau du laboratoire physico-chimie du CNRDPA jusqu’au délai de
leur analyse.
II.5. Mesures in situ
Les paramètres physico-chimiques ; la salinité, la température, le pH, l’oxygène dissous ainsi
que la conductivité ont été relevés in situ à chaque profondeur pour toute les stations, et cela à
l’aide d’un multi-paramètre professionnel du type « Hanna HI 9829 ».
Partie II : Etude biologique et traitement des donnés
II. 1. Etude biologique du peuplement phytoplanctonique
A. La méthode d’UTERMÖHL
Le dénombrement des cellules micro-algales durant ce travail a été effectué
sur des échantillons de 100 ml, à l’aide d’un microscope inversé (OPTIKA) conformément à la
méthode d’UTERMÖHL (1958).
Cette méthode présente l’avantage d’une estimation du qualitative du phytoplancton, elle permet
le dénombrement du phytoplancton, ainsi que l’observation de chaque cellule. (Dadi, 2002)
B. Facteur de dilution des échantillons
L’échantillon en question doit être homogénéisé et agité avant de procéder à la sédimentation.
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Cognac, à raison d’environ 8 gouttes par un demi-litre d’échantillon. Cette fixation présente
plusieurs avantages :
Les Flagellés conservent en majorité leurs flagelles.
Les cellules phytoplanctoniques prennent une coloration brune claire ce qui facilite
l’observation microscopique. (Rossi, 2008)
Le Lugol permet une bonne sédimentation du phytoplancton. (Dadi, 2002)
Les échantillons sont gardés par la suite dans une glacière et en obscurité afin d’éviter la
détérioration du phytoplancton. (Dadi, 2002)
B. Conservation des échantillons destinés à l’analyse des sels nutritifs :
Selon (Lampert, 2001), les échantillons destinés à l’analyse des sels nutritifs doivent être
congelés immédiatement à –20°C si l’analyse est programmée pour une date ultérieure. Ainsi les
échantillons sont gardés au niveau du laboratoire physico-chimie du CNRDPA jusqu’au délai de
leur analyse.
II.5. Mesures in situ
Les paramètres physico-chimiques ; la salinité, la température, le pH, l’oxygène dissous ainsi
que la conductivité ont été relevés in situ à chaque profondeur pour toute les stations, et cela à
l’aide d’un multi-paramètre professionnel du type « Hanna HI 9829 ».
Partie II : Etude biologique et traitement des donnés
II. 1. Etude biologique du peuplement phytoplanctonique
A. La méthode d’UTERMÖHL
Le dénombrement des cellules micro-algales durant ce travail a été effectué
sur des échantillons de 100 ml, à l’aide d’un microscope inversé (OPTIKA) conformément à la
méthode d’UTERMÖHL (1958).
Cette méthode présente l’avantage d’une estimation du qualitative du phytoplancton, elle permet
le dénombrement du phytoplancton, ainsi que l’observation de chaque cellule. (Dadi, 2002)
B. Facteur de dilution des échantillons
L’échantillon en question doit être homogénéisé et agité avant de procéder à la sédimentation.