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proie vivante irremplaçable dans l’élevage larvaire de nombreux poissons et crustacés
(SORGELOOS, 1980).
Nous avons utilisé l’artémia d’après la méthode détaillée par BARNABE, 1981. Dans une
bouteille en verre de 3L, remplie de 2L d’eau de mer (salinité de 35 ‰) et aérée en
continue par un diffuseur d’oxygène (qui assure au mois 2 mg/l d’O2 dissous), nous avons
mis 2g de cystes secs d’artémia. Cette incubation à été exposée à une lumière de 2000 lux
pendant 48h et à une température constante de 28˚C fourni par une résistance placée dans
la bouteille.
L’incubation a porté sur deux souches d’Artémia, une souche locale (du Chott de Ouargla)
avec un taux d’éclosion de 59,83 % après 48h d’incubation et une souche importée (San
Franciscana) dont le taux d’éclosion est 95% après 24h.
1 – Cystes d’artémia observés sous la loupe binoculaire.
2 – Incubation.
3 – Eclosion.
4 – Siphonage des nauplius d’artémia.
5 – Filtration.
6 – Rinçage.
7 – Nauplius d’artémia fraichement éclos.
7 – Distribution des nauplius d’artémia.
2
4
3
8
5
1
6
7
467µm
Figure 36 : Utilisation d’artémia
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Reproduction artificielle, alevinage et prégrossissement de la carpe Koî ( cyprinus carpio carpio) avec un essai d\'amélioration par l\'utilisation des pigments: - 51/104

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