Régime de production primaire dans le bassin algérien : interaction facteurs du milieu successions planctoniques
| Matériel et méthodes
Les mesures continues d’oxygène dissous ont été réalisées par un capteur “Sea-Bird SBE 43”.
Les profils obtenus ont été ajustés à partir d’échantillons discrets analysés par la méthode
Winkler. L’ajustement a été réalisé en suivant la méthode de post-correction des données
d’oxygène dissous issues de la CTD, préconisée par Sea-Bird. La procédure et le résultat des
ajustements sont présentés en Annexe 1.
Les profils continus de fluorescence ont été réalisés à l'aide d’un capteur de fluorescence
(Chelsea Acquatracka) le long de la colonne d’eau. De même, en vue de caractériser la
biomasse de manière quantitative, des corrections ont été apportées aux profils de fluorescence
à partir des analyses de chlorophylle a par HPLC des échantillons discrets, suivant les
recommandations de (Lavigne et al., 2012) (Annexe 2).
Concernant l’UVP, plusieurs problèmes techniques ont été rencontrés lors de la récolte des
profils durant la campagne (arrêt du signal d’acquisition après quelques profils, problème de
connexion avec l’instrument, caméra figée, décharge des batteries, etc.). Afin d’éviter toute
mauvaise interprétation des données, l’utilisation des profils UVP a été évitée dans ce travail.
2.2.2 Prélèvements d’eau avec la rosette
Lors de la remontée de la CTD-Rosette, des paliers discrets ont été réalisés au niveau desquels
des échantillons d'eau ont été prélevés, qui ont été soit analysé à bord pour leur teneur en
oxygène (par la méthode Winkler), soit conservés et fixés en vue de leur analyse à terre (sels
nutritifs), soit filtrés à bord pour extraction des pigments à terre (par méthode HPLC).
2.2.2.1 Oxygène dissous
Des mesures quotidiennes de l'oxygène dissous par la méthode potentiométrique de Winkler
modifiée par Langdon (2010) ont servi de points d'étalonnage.
L’échantillonnage pour la mesure de l’oxygène dissous a été effectué dès la remontée des
bouteilles Niskin et avant tout autre prélèvement, dans des flacons en verre borosilicaté de 180
ml à bouchon plongeant et collerette. Le remplissage des flacons a été réalisé à partir du fond
à l’aide d’un tuyau en silicone en respectant toutes les précautions nécessaires pour éviter
toute contamination de l'échantillon par les bulles d’air. 2 ml de réactifs ont été ajoutés dès le
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| Matériel et méthodes
Les mesures continues d’oxygène dissous ont été réalisées par un capteur “Sea-Bird SBE 43”.
Les profils obtenus ont été ajustés à partir d’échantillons discrets analysés par la méthode
Winkler. L’ajustement a été réalisé en suivant la méthode de post-correction des données
d’oxygène dissous issues de la CTD, préconisée par Sea-Bird. La procédure et le résultat des
ajustements sont présentés en Annexe 1.
Les profils continus de fluorescence ont été réalisés à l'aide d’un capteur de fluorescence
(Chelsea Acquatracka) le long de la colonne d’eau. De même, en vue de caractériser la
biomasse de manière quantitative, des corrections ont été apportées aux profils de fluorescence
à partir des analyses de chlorophylle a par HPLC des échantillons discrets, suivant les
recommandations de (Lavigne et al., 2012) (Annexe 2).
Concernant l’UVP, plusieurs problèmes techniques ont été rencontrés lors de la récolte des
profils durant la campagne (arrêt du signal d’acquisition après quelques profils, problème de
connexion avec l’instrument, caméra figée, décharge des batteries, etc.). Afin d’éviter toute
mauvaise interprétation des données, l’utilisation des profils UVP a été évitée dans ce travail.
2.2.2 Prélèvements d’eau avec la rosette
Lors de la remontée de la CTD-Rosette, des paliers discrets ont été réalisés au niveau desquels
des échantillons d'eau ont été prélevés, qui ont été soit analysé à bord pour leur teneur en
oxygène (par la méthode Winkler), soit conservés et fixés en vue de leur analyse à terre (sels
nutritifs), soit filtrés à bord pour extraction des pigments à terre (par méthode HPLC).
2.2.2.1 Oxygène dissous
Des mesures quotidiennes de l'oxygène dissous par la méthode potentiométrique de Winkler
modifiée par Langdon (2010) ont servi de points d'étalonnage.
L’échantillonnage pour la mesure de l’oxygène dissous a été effectué dès la remontée des
bouteilles Niskin et avant tout autre prélèvement, dans des flacons en verre borosilicaté de 180
ml à bouchon plongeant et collerette. Le remplissage des flacons a été réalisé à partir du fond
à l’aide d’un tuyau en silicone en respectant toutes les précautions nécessaires pour éviter
toute contamination de l'échantillon par les bulles d’air. 2 ml de réactifs ont été ajoutés dès le
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