POLLUANTS ORGANIQUES
2. PRÉLÈVEMENT, CONSERVATION
Les prélèvements sont effectués selon les recommandations du chapitre L
Les organismes marins sont collectés en nombre suffisant et avec précaution pour éviter toute souillure. Ils sont aussitôt placés dans des feuilles
d'aluminium et conservés congelés jusqu’à leur préparation pour l’analyse,
effectuée selon les indications du chapitre L On peut également conserver
les échantillons lyophilisés.
3. APPAREILLAGE
3.1. MATÉRIEL DE PRÉPARATION
— Lyophilisateur.
— Broyeur de tissus, type virtis.
— Appareil d’agitation pour ampoules à décanter.
— Centrifugeuse.
Colonnes de chromatographie d’adsorption, diamètre intérieur 1 cm,
hauteur 30 cm, avec un réservoir de 50 ml, équipées d’un robinet à clé de
téflon.
— Evaporateur rotatif.
— Rampe d’évaporation sous azote.
— Verrerie, à bouchage de téflon, qui sera lavée au mélange sulfochromique puis à l’hexane.
3.2. CHROMATOGRAPHE EN PHASE GAZEUSE
— Chromatographe équipé d’un injecteur « split-splitless » ou plutôt
« on-column » et d'un détecteur à ionisation de flamme (exemple : carloerba 2150).
Colonne capillaire de verre de 50 m x 0,3 mm imprégnée d’un film
de phase silicone OV-1 de 0,15 pm (P = 500).
Détecteur à photométrie de flamme mode soufre (exemple : modèle
SSD. carlo-erba). Le chromatographe doit permettre le changement rapide
des détecteurs.
3.3. CHROMATOGRAPHE EN PHASE LIQUIDE
— Chromatographe isocratique avec une pompe alternative à deux
têtes (exemple : ldc), équipé d’un injecteur à boucle de 25 pl (exemple :
valco).
— Détecteur UV à longueur d’onde variable avec microcuve de 8 pl
à circulation (exemple : Spectromonitor II, ldc).
Fluorimètre à filtre interférentiel avec microcuve à circulation de
30 pl (exemple : Fluoromonitor, ldc).
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2. PRÉLÈVEMENT, CONSERVATION
Les prélèvements sont effectués selon les recommandations du chapitre L
Les organismes marins sont collectés en nombre suffisant et avec précaution pour éviter toute souillure. Ils sont aussitôt placés dans des feuilles
d'aluminium et conservés congelés jusqu’à leur préparation pour l’analyse,
effectuée selon les indications du chapitre L On peut également conserver
les échantillons lyophilisés.
3. APPAREILLAGE
3.1. MATÉRIEL DE PRÉPARATION
— Lyophilisateur.
— Broyeur de tissus, type virtis.
— Appareil d’agitation pour ampoules à décanter.
— Centrifugeuse.
Colonnes de chromatographie d’adsorption, diamètre intérieur 1 cm,
hauteur 30 cm, avec un réservoir de 50 ml, équipées d’un robinet à clé de
téflon.
— Evaporateur rotatif.
— Rampe d’évaporation sous azote.
— Verrerie, à bouchage de téflon, qui sera lavée au mélange sulfochromique puis à l’hexane.
3.2. CHROMATOGRAPHE EN PHASE GAZEUSE
— Chromatographe équipé d’un injecteur « split-splitless » ou plutôt
« on-column » et d'un détecteur à ionisation de flamme (exemple : carloerba 2150).
Colonne capillaire de verre de 50 m x 0,3 mm imprégnée d’un film
de phase silicone OV-1 de 0,15 pm (P = 500).
Détecteur à photométrie de flamme mode soufre (exemple : modèle
SSD. carlo-erba). Le chromatographe doit permettre le changement rapide
des détecteurs.
3.3. CHROMATOGRAPHE EN PHASE LIQUIDE
— Chromatographe isocratique avec une pompe alternative à deux
têtes (exemple : ldc), équipé d’un injecteur à boucle de 25 pl (exemple :
valco).
— Détecteur UV à longueur d’onde variable avec microcuve de 8 pl
à circulation (exemple : Spectromonitor II, ldc).
Fluorimètre à filtre interférentiel avec microcuve à circulation de
30 pl (exemple : Fluoromonitor, ldc).
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