136
Microbiologie pratique pour le laboratoire d’analyses ou de contrôlesan
Les précisions taxonomiques sur le genre Micrococcus ne sont pas indiq.
dans la fiche technique du milieu (2003). Il faut donc préciser que ce mi
assure la différenciation du genre Staphylococcus des genres Microaa
Kocuria, Kytococcus, Dermacoccus, autrefois classés dans le seul genre Mi.
coccus (cf. annexe générale 3 « Classification phylogénique des bactéries
deuxième partie, chapitre 9 « Staphylococcus, Micrococcus et ex-Microcom
paragraphe 6.2.2.).
2.1.2.1. Composition chimique du milieu de culture
La composition chimique de ce milieu de culture en g/L d’eau distilléee<
Dihydrogénophosphate d’ammonium................................................ 1
Chlorure de potassium........................................................................ 0,2
Sulfate de magnésium ........................................................................ 0,2
Extrait de levure.................................................................................. 1
Glucose...................................................................................................10
Agar...................................................................................................... 3,2
Solution de pourpre de bromocrésol à 0,2 %................................... 7,5
Ce milieu est disponible en tube étroit (6 mL par tube) prêt à l’emploi.
2.1.2.2. Ensemencement et incubation du milieu
Prendre un tube de MEVAG Staphylococcus prêt à l’emploi et le régénéré
bain-marie bouillant, puis le refroidir immédiatement dans l’eau froide.
Ensemencer le milieu par piqûre centrale à partir d’une culture pure etfra
prélevée sur milieu gélosé. Plus précisément effectuer un mouvementée'
vient au tond du tube, afin d’apporter plus de bactéries, puis retirer 1 anse'
calement pour limiter l’aération du milieu.
Incuber 18 à 24 heures à 37 °C.
2.1.2.3. Lecture et interprétation du milieu
Le pourpre de bromocrésol, indicateur de pH est jaune en milieu acide et'
en milieu basique (milieu non ensemencé coloré en violet). Lorsque le glt
est utilisé par les bactéries, les acides produits le font virer au jaune en su
si y a oxydation) ou en profondeur (s’il y a fermentation).
Observer les tubes et interpréter les résultats suivant les indications dot
dans le tableau 55.
Microbiologie pratique pour le laboratoire d’analyses ou de contrôlesan
Les précisions taxonomiques sur le genre Micrococcus ne sont pas indiq.
dans la fiche technique du milieu (2003). Il faut donc préciser que ce mi
assure la différenciation du genre Staphylococcus des genres Microaa
Kocuria, Kytococcus, Dermacoccus, autrefois classés dans le seul genre Mi.
coccus (cf. annexe générale 3 « Classification phylogénique des bactéries
deuxième partie, chapitre 9 « Staphylococcus, Micrococcus et ex-Microcom
paragraphe 6.2.2.).
2.1.2.1. Composition chimique du milieu de culture
La composition chimique de ce milieu de culture en g/L d’eau distilléee<
Dihydrogénophosphate d’ammonium................................................ 1
Chlorure de potassium........................................................................ 0,2
Sulfate de magnésium ........................................................................ 0,2
Extrait de levure.................................................................................. 1
Glucose...................................................................................................10
Agar...................................................................................................... 3,2
Solution de pourpre de bromocrésol à 0,2 %................................... 7,5
Ce milieu est disponible en tube étroit (6 mL par tube) prêt à l’emploi.
2.1.2.2. Ensemencement et incubation du milieu
Prendre un tube de MEVAG Staphylococcus prêt à l’emploi et le régénéré
bain-marie bouillant, puis le refroidir immédiatement dans l’eau froide.
Ensemencer le milieu par piqûre centrale à partir d’une culture pure etfra
prélevée sur milieu gélosé. Plus précisément effectuer un mouvementée'
vient au tond du tube, afin d’apporter plus de bactéries, puis retirer 1 anse'
calement pour limiter l’aération du milieu.
Incuber 18 à 24 heures à 37 °C.
2.1.2.3. Lecture et interprétation du milieu
Le pourpre de bromocrésol, indicateur de pH est jaune en milieu acide et'
en milieu basique (milieu non ensemencé coloré en violet). Lorsque le glt
est utilisé par les bactéries, les acides produits le font virer au jaune en su
si y a oxydation) ou en profondeur (s’il y a fermentation).
Observer les tubes et interpréter les résultats suivant les indications dot
dans le tableau 55.