Méthodes de travail en microbiologie
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Tableau 36 (suite) ■ Bactéries en forme de bâtonnets, incurvées et hélicoïdales.
Formes
générales
Particularités
des cellules
Groupements
Bactéries
Forme
incurvée :
bacille incurvé
Incurvées « en
vibrion »
Cellules isolées,
par deux...
Vihrio cholerae
(vibrion du choléra)
Incurvées en
virgule
Vibrio (autres espèces)
Campylobacter *
Formes hélicoïdales
Cellules hélicoïdales, courtes, rigides, 2
à 10 pm à ciliation lophotriche
Spirillum
Campylobacter
Cellules hélicoïdales 10 à
15 pm x 0,1 pm, à extrémités recourbées
en crochets
Leptospira interrogans, (sérotypes) agents de la
leptospirose?
Cellules hélicoïdales à spires serrées, à
extrémités effilées
7 à 14 pm environ x 0,25 à 0,30 pm
Treponema pallidum (tréponème pâle, agent de la syphilis)
Formes diverses
De nombreuses bactéries de l’environnement, saprophytes, intervenant dans
les grands cycles biologiques naturels (carbone, azote, soufre et fer)
Lavoisier
- La
photocopie non
autorisée est un
aem
' Bactéries pathogènes pour l'homme, agents de maladies infectieuses non liées à une contamination d'origine
alimentaire ou hydrique.
1. Avec parfois un polymorphisme de longueur (Proteus...).
2. Delarras et Trébaol (2003).
3. cf. deuxième partie, chapitre 3 « Campylobacter », paragraphe 3.
4.2.1. Examen à l’état frais
4.2.1.1. Intérêt
Il permet l’observation des bactéries vivantes et la détermination de leur morphologie, de leur mode de groupement, de leur mobilité éventuelle et de la quantité approximative de bactéries.
Pour l’appréciation de la mobilité, il est parfois nécessaire de recourir au test de
la mobilité bactérienne ; il peut être réalisé en milieu mannitol mobilité nitrates ou
en milieu nutritif SIM (cf. première partie, chapitre 5 « Milieux de culture et tests
biochimiques pour l’identification bactérienne ». paragraphes 2.2.4.1. et 3.5.2.).
4.2.1.2. Technique
Prendre une lame propre nettoyée avec un coton imbibé d’alcool à 95° :
- dans le cas d’une culture en milieu liquide (bouillon), déposer sur la lame
une goutte de cette culture, à l’aide d'une pipette Pasteur stérile ou un inoculum
avec une anse de platine ;
- dans le cas d’une culture sur milieu solide (gélosé) en tube ou sur boîte de
Pétri, déposer tout d’abord sur la lame une goutte d’eau distillée stérile ou d’eau
physiologique stérile, puis apporter et dissocier dans l’eau un inoculum
bactérien ;
- recouvrir d’une lamelle, puis luter la préparation avec de la paraffine ou de
la vaseline ;
- observer au microscope optique à l 'objectif x 40 ou x 60. Pour mettre en évidence certains détails de structure, l’objectif x 100 à l’immersion doit être utilisé.
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Tableau 36 (suite) ■ Bactéries en forme de bâtonnets, incurvées et hélicoïdales.
Formes
générales
Particularités
des cellules
Groupements
Bactéries
Forme
incurvée :
bacille incurvé
Incurvées « en
vibrion »
Cellules isolées,
par deux...
Vihrio cholerae
(vibrion du choléra)
Incurvées en
virgule
Vibrio (autres espèces)
Campylobacter *
Formes hélicoïdales
Cellules hélicoïdales, courtes, rigides, 2
à 10 pm à ciliation lophotriche
Spirillum
Campylobacter
Cellules hélicoïdales 10 à
15 pm x 0,1 pm, à extrémités recourbées
en crochets
Leptospira interrogans, (sérotypes) agents de la
leptospirose?
Cellules hélicoïdales à spires serrées, à
extrémités effilées
7 à 14 pm environ x 0,25 à 0,30 pm
Treponema pallidum (tréponème pâle, agent de la syphilis)
Formes diverses
De nombreuses bactéries de l’environnement, saprophytes, intervenant dans
les grands cycles biologiques naturels (carbone, azote, soufre et fer)
Lavoisier
- La
photocopie non
autorisée est un
aem
' Bactéries pathogènes pour l'homme, agents de maladies infectieuses non liées à une contamination d'origine
alimentaire ou hydrique.
1. Avec parfois un polymorphisme de longueur (Proteus...).
2. Delarras et Trébaol (2003).
3. cf. deuxième partie, chapitre 3 « Campylobacter », paragraphe 3.
4.2.1. Examen à l’état frais
4.2.1.1. Intérêt
Il permet l’observation des bactéries vivantes et la détermination de leur morphologie, de leur mode de groupement, de leur mobilité éventuelle et de la quantité approximative de bactéries.
Pour l’appréciation de la mobilité, il est parfois nécessaire de recourir au test de
la mobilité bactérienne ; il peut être réalisé en milieu mannitol mobilité nitrates ou
en milieu nutritif SIM (cf. première partie, chapitre 5 « Milieux de culture et tests
biochimiques pour l’identification bactérienne ». paragraphes 2.2.4.1. et 3.5.2.).
4.2.1.2. Technique
Prendre une lame propre nettoyée avec un coton imbibé d’alcool à 95° :
- dans le cas d’une culture en milieu liquide (bouillon), déposer sur la lame
une goutte de cette culture, à l’aide d'une pipette Pasteur stérile ou un inoculum
avec une anse de platine ;
- dans le cas d’une culture sur milieu solide (gélosé) en tube ou sur boîte de
Pétri, déposer tout d’abord sur la lame une goutte d’eau distillée stérile ou d’eau
physiologique stérile, puis apporter et dissocier dans l’eau un inoculum
bactérien ;
- recouvrir d’une lamelle, puis luter la préparation avec de la paraffine ou de
la vaseline ;
- observer au microscope optique à l 'objectif x 40 ou x 60. Pour mettre en évidence certains détails de structure, l’objectif x 100 à l’immersion doit être utilisé.