Tableau 1 - Oiseaux analysés.
Échantillon
Source d’ADN
Localisation
564-111)
Muscle
Lorient, 47°45’N, 3°20’O
SA 884.233
Muscle
Banneg, 48°50’N, 4°30’O
SA 544.012
Sang
Banneg, 48°50’N, 4°30’O
SA 544.438
Sang
Banneg, 48°50’N, 4°30’O
SA 544.443
Sang
Banneg, 48°50’N, 4°30’O )
SA 544.009
Sang
Banncg, 48°50’N, 4°30’O
SA 548.747
Sang
Biarritz, 43°30’N, 1°30’( )
SA 548.528
Sang
Biarritz, 43°30’N, 1°30’()
SA 548.748
Sang
Biarritz, 43°30’N, 1°30’( )
SA 548.974
Sang
Biarritz, 43°30’N, 1°30’< )
P730E
Muscle
Fcroé, 62°N, 7°()
SA 653.043
Sang
Corse, 41°20’N, 9°1()’E
SA 653.044
Sang
Corse, 41°2()’N, 9°10’E
SA 653.046
Sang
Corse, 41°20’N, 9°10’H
M18-19
SffiA
Corse, 41°20’N, 9°10’E
L’ADN est extrait à l’aide du kit Hasy-DNA (Imitrogen), puis la région correspondant au gène mitochoncirial codant pour le q'tochrome b est amplifiée par
PCR grâce à un couple d’amorces (fig. 2). Irts fragments obtenus sont purifiés
sur gel avec le kit Qiaquick gel extraction (Qiagen) avant d’être séquencés avec le
kit Bigldye terminator cycle sequendng sur séquenceur automatique ABIPRISM377 DN/V sequencer (Perkin Elmer Applied BiosyNtems).
Figure 2 - Génome mitochondrial aviaire. Le gène codant pour le cytochrome b (cyt b) est
montré, entre les gènes thréonine-tRNA et ND5. Les amorces 1 et 2 utilisées pour amplifier
par PCR une portion du gène cytochrome b sont représentées par des flèches noires.
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