CHAPITRE QUATRIEME
LA CLAIRANCE
46
2.2.3. Calcul du taux de clairance
Le taux de clairance (TF) a été estimé par la suite de la diminution exponentielle du
nombre de cellules phytoplanctoniques (Newell, et Shumway 1993 in Okumuş, 2001) par
l’équation suivante :
TF (l/h) = V x log (C 0 / Ct) / t
Où V: volume de la solution dans le flacon, Co: Concentration initiale de cellules,
Ct:Concentration de cellules à temps, t.
2.3. Déroulement des expériences
Les moules ont été placés individuellement dans des flacons (500 ml) avec trois
réplicas (Fig.21), après avoir ajusté la concentration de cellules de microalgues pour chaque
expérience. Le moment où la dernière moule a ouvert ses valves, a été pris comme le début
des expériences.
Figure 21. Mise des moules M.galloprovincialis dans les flacons (C 1 :1140*10
3 , C 2 :
2100*10
3 et C 3 :3180*10
3 cell/ml). (Expérience 1).
Les expériences ont été réalisées à une température de 18 C°. Un échantillon de 1 ml
d'eau de chaque flacon a été prélevé toutes les 15 min, pendant 60 min, dans des tubes à essais
pour déterminer La concentration cellulaire de Nannochloropsis oculata par un comptage
sous microscope (40x).
L’eau dans les flacons n'a pas été remuée ou aérée puisque ceci pourrait affecter le
processus de filtration de la moule (Yukihiko et Takuji, 1997), les pseudofèces (Fig.22) n’ont
pas été enlevées avec une pipette pasteur durant les expériences.
C 1
C 2
C 3
LA CLAIRANCE
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2.2.3. Calcul du taux de clairance
Le taux de clairance (TF) a été estimé par la suite de la diminution exponentielle du
nombre de cellules phytoplanctoniques (Newell, et Shumway 1993 in Okumuş, 2001) par
l’équation suivante :
TF (l/h) = V x log (C 0 / Ct) / t
Où V: volume de la solution dans le flacon, Co: Concentration initiale de cellules,
Ct:Concentration de cellules à temps, t.
2.3. Déroulement des expériences
Les moules ont été placés individuellement dans des flacons (500 ml) avec trois
réplicas (Fig.21), après avoir ajusté la concentration de cellules de microalgues pour chaque
expérience. Le moment où la dernière moule a ouvert ses valves, a été pris comme le début
des expériences.
Figure 21. Mise des moules M.galloprovincialis dans les flacons (C 1 :1140*10
3 , C 2 :
2100*10
3 et C 3 :3180*10
3 cell/ml). (Expérience 1).
Les expériences ont été réalisées à une température de 18 C°. Un échantillon de 1 ml
d'eau de chaque flacon a été prélevé toutes les 15 min, pendant 60 min, dans des tubes à essais
pour déterminer La concentration cellulaire de Nannochloropsis oculata par un comptage
sous microscope (40x).
L’eau dans les flacons n'a pas été remuée ou aérée puisque ceci pourrait affecter le
processus de filtration de la moule (Yukihiko et Takuji, 1997), les pseudofèces (Fig.22) n’ont
pas été enlevées avec une pipette pasteur durant les expériences.
C 1
C 2
C 3
