Troisième partie : Résultat et discussions
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 répartir de l’eau distillée stérile dans les alvéoles pour créer une atmosphère
humide,
 déposer stérilement la galerie dans la boîte d’incubation.
c) Préparation de l’inoculum :
 réaliser une suspension bactérienne dans un tube contenant 5 ml d’eau distillée
stérile sans additifs, avec une seule colonie (bien isolée) prélevée sur un milieu
gélosé et homogénéiser soigneusement.
d) Inoculation de la galerie :
 introduire la suspension bactérienne dans les tubes de la galerie à l’aide de la
même pipette en évitant la formation des bulles d’air,
 remplir les tubes et les cupules des tests : CIT, VP, GEL avec la suspension
bactérienne,
 remplir uniquement les tubes des autres tests,
 créer une anaérobiose dans les tests : ADH, LDC, ODC, URE, H 2 S en
remplissant leur cupule d’huile de vaseline stérile,
 refermer la boîte d’incubation,
 incuber à 37°C pendant 24 heures.
e) Lecture :
 après incubation, la lecture de la galerie doit se faire en se référant au tableau
de lecture,
 noter sur la fiche de résultats toutes les réactions spontanées (+ ou -),
 réaliser les tests nécessitant l’addition de réactifs :
test TDA:1 goutte de réactif TDA,
test IND : 1 goutte de réactif Kovacs,