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4. Méthodologie utilisé au laboratoire
4.1. Analyse de l’eau
4.1.1. La chlorophylle a et phéopigments
Le phytoplancton est le premier producteur de matière vivante au sein de la chaine
alimentaire, c’est pourquoi le potentiel de synthèse organique a été désigné par le terme de «
production primaire ou productivité primaire » (PERES et DEVEZ., 1963 in MAURIN., 1974).
Pour l’évaluer, il est logique de chercher à doser les pigments chlorophylliens et plus
précisément la chlorophylle a. (MAURIN., 1974), la variation de la chlorophylle a dépend
essentiellement de la concentration du milieu en sels nutritifs, de l’intensité de la lumière et de
l’activité du zooplancton par le broutage, qui entraine la dégradation des cellules puis la formation
des phéopigments (AMINOT et KEROUEL., 2004).
Principe :
La chlorophylle a est mesurée par la méthode spectrophotométrique monochromatique de
LORENZEN (1967), selon AMINOT et KEROUEL (2004)
Mode opératoire:
-Filtrer 250ml de l’échantillon sur un filtre de wattman GF/F 0,45µm, à l’aide d’une pompe de
marque KMF NEUBE REGER, type N022 .AN.18 .
-Additionner 10ml d’acétone à 90% dans des tubes à essai.
-Passer les filtres dans un bac à ultra sons (VWR LUSL 300 TH) durant 15mn.
-Conserver les échantillons à l’abri de la lumière au réfrigérateur.
-Mesuré l’absorbance des échantillons dans des cuves de 1cm de trajet optique à l’aide d’un
spectrophotomètre de marque DECIL type CE1021 série 10000, à deux longueurs d’ondes 650 et
750, avant et après acidification (acide chlorhydrique à 0,3mol/l).
-Mesurer l’absorbance du blanc acétone et du blanc filtre aux deux longueurs d’ondes.
4. Méthodologie utilisé au laboratoire
4.1. Analyse de l’eau
4.1.1. La chlorophylle a et phéopigments
Le phytoplancton est le premier producteur de matière vivante au sein de la chaine
alimentaire, c’est pourquoi le potentiel de synthèse organique a été désigné par le terme de «
production primaire ou productivité primaire » (PERES et DEVEZ., 1963 in MAURIN., 1974).
Pour l’évaluer, il est logique de chercher à doser les pigments chlorophylliens et plus
précisément la chlorophylle a. (MAURIN., 1974), la variation de la chlorophylle a dépend
essentiellement de la concentration du milieu en sels nutritifs, de l’intensité de la lumière et de
l’activité du zooplancton par le broutage, qui entraine la dégradation des cellules puis la formation
des phéopigments (AMINOT et KEROUEL., 2004).
Principe :
La chlorophylle a est mesurée par la méthode spectrophotométrique monochromatique de
LORENZEN (1967), selon AMINOT et KEROUEL (2004)
Mode opératoire:
-Filtrer 250ml de l’échantillon sur un filtre de wattman GF/F 0,45µm, à l’aide d’une pompe de
marque KMF NEUBE REGER, type N022 .AN.18 .
-Additionner 10ml d’acétone à 90% dans des tubes à essai.
-Passer les filtres dans un bac à ultra sons (VWR LUSL 300 TH) durant 15mn.
-Conserver les échantillons à l’abri de la lumière au réfrigérateur.
-Mesuré l’absorbance des échantillons dans des cuves de 1cm de trajet optique à l’aide d’un
spectrophotomètre de marque DECIL type CE1021 série 10000, à deux longueurs d’ondes 650 et
750, avant et après acidification (acide chlorhydrique à 0,3mol/l).
-Mesurer l’absorbance du blanc acétone et du blanc filtre aux deux longueurs d’ondes.