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Chapitre II : Matériel et méthodes
Pendant les manipulations, le traitement peut minimiser la contamination des
blessures Le sel de table a été utilisé à une dose de 10g par un litre d'eau. Par
contre pour les œufs, le bleu de méthylène a été utilisés 5ml/50L d'eau (Uhland,
2006).
Figure II.21 : Géniteur infécté recouvert de Mycoses cutanées et œufs opaques
couverts de champignons .
1.4.19 .Développement embryonnaire
Afin de suivre le développement embryonnaire, des observations microscopiques
de quelques œufs ont été effectuées chaque 2 à 3h.
Pendant la période d'incubation, il convient de régler le débit d'eau suivant le s
stades de développement des œu fs.
Pour des œufs de carpe commune incubés en bouteille de Zoug il faudra environ:
De 0,2 à 0,4 l/min pendant le gonfle ment des œufs.
De 0,6 à 0,8 l/min de la division cellulaire au stade morula.
De 1 à 1,2 l/ min des phases blastula au début de la formation des yeux.
De 1,5à 2 l/min pendant la formation des yeux jusqu'à l'éclosion .
1.4.20 .Elimination des œufs défectueux et des détritus présents dans
l'incubateur
Dès que le développement de l'œuf parvient au stade de la fermeture du
blastopore. On essayera si possible de faire sortir de l'incubateur les œ ufs
défectueux. Aux stades suivants, on enlève les détritus tels que les coques
d'œufs au fur et à mesure de l' éclosion. Cette tâche est relativement aisée dans
le cas d'œufs non adhérents incubes dans une auge ou dans un incubateur
vertical transparent, au moyen d'un tube de siphonage(Nations, 1999).
1.4.21 .Eclosion
Après quelques jours d’incubation, les premières éclosions ont été observées.
Quelques heures après, tous les œufs ont éclos . Les larves ont été transférées
des bouteilles de Zoug vers deux bacs en fibre de verre par siphonage cas de la
carpe, tandis que les larves du sandre ont été transférées dans des aquariums.
Chapitre II : Matériel et méthodes
Pendant les manipulations, le traitement peut minimiser la contamination des
blessures Le sel de table a été utilisé à une dose de 10g par un litre d'eau. Par
contre pour les œufs, le bleu de méthylène a été utilisés 5ml/50L d'eau (Uhland,
2006).
Figure II.21 : Géniteur infécté recouvert de Mycoses cutanées et œufs opaques
couverts de champignons .
1.4.19 .Développement embryonnaire
Afin de suivre le développement embryonnaire, des observations microscopiques
de quelques œufs ont été effectuées chaque 2 à 3h.
Pendant la période d'incubation, il convient de régler le débit d'eau suivant le s
stades de développement des œu fs.
Pour des œufs de carpe commune incubés en bouteille de Zoug il faudra environ:
De 0,2 à 0,4 l/min pendant le gonfle ment des œufs.
De 0,6 à 0,8 l/min de la division cellulaire au stade morula.
De 1 à 1,2 l/ min des phases blastula au début de la formation des yeux.
De 1,5à 2 l/min pendant la formation des yeux jusqu'à l'éclosion .
1.4.20 .Elimination des œufs défectueux et des détritus présents dans
l'incubateur
Dès que le développement de l'œuf parvient au stade de la fermeture du
blastopore. On essayera si possible de faire sortir de l'incubateur les œ ufs
défectueux. Aux stades suivants, on enlève les détritus tels que les coques
d'œufs au fur et à mesure de l' éclosion. Cette tâche est relativement aisée dans
le cas d'œufs non adhérents incubes dans une auge ou dans un incubateur
vertical transparent, au moyen d'un tube de siphonage(Nations, 1999).
1.4.21 .Eclosion
Après quelques jours d’incubation, les premières éclosions ont été observées.
Quelques heures après, tous les œufs ont éclos . Les larves ont été transférées
des bouteilles de Zoug vers deux bacs en fibre de verre par siphonage cas de la
carpe, tandis que les larves du sandre ont été transférées dans des aquariums.