MATERIEL ET METHODES
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L’élevage est réalisé dans des bocaux de verre d’une capacité de 1.5 à 2 L avec une
aération continue, une température de 24°C, une photopériode de 12h lumière : 12h obscurité
et une alimentation avec Tetraselmis suecica, selon le protocole de Hontoria et Amat, 1992a
afin de standardiser les conditions pour l’étude morphométrique. Durant les cinq premiers
jours, les individus sont élevés dans un milieu d’une salinité de 35 PSU, une densité
individuelle de 01 individu/ml et une densité algale de 1.2*10
5 cellules/ml, ensuite ils sont
transférés dans un milieu d’une salinité de 60 PSU avec une densité de 0.1 individu/ml et une
densité algale de 5*10
4 cellules/ml pour une durée de 5 jours et après ils sont cultivés dans un
milieu de salinité de 80 PSU pour 5 jours à une densité de 01 individu/ml et une densité algale
de 5 à 6*10
4 cellules/ml (Figure 37). La salinité est contrôlée à l’aide d’un réfractomètre de
type ATAGO S/Millz 392962.
Figure 37. Elevage d’Artémia u niveau de l’IATS/CSIC (présente étude).
6. Biométrie des nauplii
Une quantité de cystes de chaque population est incubée jusqu’à éclosion. Deux
heures avant d’atteindre le T 90 temps nécessaire pour que 90% de cystes éclosent, les nauplii
encore maintenus dans la membrane embryonnaire, sont isolés et mis dans des boîtes de
pétrie sous une source lumineuse. Une fois, les embryons se libèrent de leur membrane ils
sont fixés par une solution de lugol (Figure 38). La longueur de ces nauplii (Instar I) est
mesurée à l’aide d’un microscope équipé d’un micromètre optique (Sorgeloos et al., 1986).
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L’élevage est réalisé dans des bocaux de verre d’une capacité de 1.5 à 2 L avec une
aération continue, une température de 24°C, une photopériode de 12h lumière : 12h obscurité
et une alimentation avec Tetraselmis suecica, selon le protocole de Hontoria et Amat, 1992a
afin de standardiser les conditions pour l’étude morphométrique. Durant les cinq premiers
jours, les individus sont élevés dans un milieu d’une salinité de 35 PSU, une densité
individuelle de 01 individu/ml et une densité algale de 1.2*10
5 cellules/ml, ensuite ils sont
transférés dans un milieu d’une salinité de 60 PSU avec une densité de 0.1 individu/ml et une
densité algale de 5*10
4 cellules/ml pour une durée de 5 jours et après ils sont cultivés dans un
milieu de salinité de 80 PSU pour 5 jours à une densité de 01 individu/ml et une densité algale
de 5 à 6*10
4 cellules/ml (Figure 37). La salinité est contrôlée à l’aide d’un réfractomètre de
type ATAGO S/Millz 392962.
Figure 37. Elevage d’Artémia u niveau de l’IATS/CSIC (présente étude).
6. Biométrie des nauplii
Une quantité de cystes de chaque population est incubée jusqu’à éclosion. Deux
heures avant d’atteindre le T 90 temps nécessaire pour que 90% de cystes éclosent, les nauplii
encore maintenus dans la membrane embryonnaire, sont isolés et mis dans des boîtes de
pétrie sous une source lumineuse. Une fois, les embryons se libèrent de leur membrane ils
sont fixés par une solution de lugol (Figure 38). La longueur de ces nauplii (Instar I) est
mesurée à l’aide d’un microscope équipé d’un micromètre optique (Sorgeloos et al., 1986).