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Mis à part la taille des ovocytes, On peut aussi vérifier leur maturation en les observant
sous la loupe binoculaire pour déterminer le stade de migration de leurs noyaux. Pour cela
il faut mettre les ovocytes prélevés dans une boite pétrie et rajouter le liquide de SERA (six
volumes d’alcool éthanol 95˚, trois volumes de formol et un volume d’acide acétique) qui
sert à rendre les ovocytes complètement translucides. Après 5 à 10mn, si on observe les
noyaux au stade 4 (périphérique) ou bien au stade 3 (proche de la périphérie de l’ovocyte)
on peut entamer l’injection hormonale pour le géniteur sur lequel nous avons prélevé ces
ovocytes, sinon, il faut prolonger la durée de stabulation jusqu’à la maturation des
ovocytes.
Pour le marquage des géniteurs, il existe plusieurs techniques. Notre méthode consiste à
prendre une photo pour chaque géniteur et l’enregistrer sur ordinateur afin de l’identifier à
partir de sa couleur et son dessin unique qui recouvre sa peau.
II.3.5.6 Traitement hormonal
II.3.5.6.1 L’hormone hypophysaire
Dans la méthode de reproduction semi-artificielles ou artificielles, il faut se procurer des
substances chimiques (ou hormones) qui jouent un rôle décisif dans l'ovulation, c'est-à-dire
la maturité finale des œufs dormants, Ces substances chimiques, les gonadotropines, sont
produites, accumulées et emmagasinées dans la glande pituitaire du poisson,
appelée hypophyse, pendant leur passage au stade de la maturité sexuelle (FAO, 2010).
Cette petite glande pituitaire se trouve dans la partie supérieure de la tête du poisson, (sur
le côté ventral du cerveau. La collecte de ces glandes prélevées sur des poissons parvenus à
maturité ne pose aucune difficulté, de même que leur stockage en vue d'une utilisation
ultérieure, si nécessaire, et l'extraction des hormones gonadotropes qu'elles contiennent.
1 – Enlever la partie supérieure de la boîte
crânienne à un angle de 90˚ derrière les yeux, au
moyen d'une scie ou d'un couteau bien aiguisé.
2 – Repérer l'emplacement de la glande pituitaire
dans la masse cérébrale et l’extraire soigneusement
au moyen de pinces.
90˚
2
1
Figure 28 : Récolte des glandes pituitaires par sectionnement de la tête d’une carpe
lors du stage pratique de la 4
ème année au niveau d’EL KALA.
Mis à part la taille des ovocytes, On peut aussi vérifier leur maturation en les observant
sous la loupe binoculaire pour déterminer le stade de migration de leurs noyaux. Pour cela
il faut mettre les ovocytes prélevés dans une boite pétrie et rajouter le liquide de SERA (six
volumes d’alcool éthanol 95˚, trois volumes de formol et un volume d’acide acétique) qui
sert à rendre les ovocytes complètement translucides. Après 5 à 10mn, si on observe les
noyaux au stade 4 (périphérique) ou bien au stade 3 (proche de la périphérie de l’ovocyte)
on peut entamer l’injection hormonale pour le géniteur sur lequel nous avons prélevé ces
ovocytes, sinon, il faut prolonger la durée de stabulation jusqu’à la maturation des
ovocytes.
Pour le marquage des géniteurs, il existe plusieurs techniques. Notre méthode consiste à
prendre une photo pour chaque géniteur et l’enregistrer sur ordinateur afin de l’identifier à
partir de sa couleur et son dessin unique qui recouvre sa peau.
II.3.5.6 Traitement hormonal
II.3.5.6.1 L’hormone hypophysaire
Dans la méthode de reproduction semi-artificielles ou artificielles, il faut se procurer des
substances chimiques (ou hormones) qui jouent un rôle décisif dans l'ovulation, c'est-à-dire
la maturité finale des œufs dormants, Ces substances chimiques, les gonadotropines, sont
produites, accumulées et emmagasinées dans la glande pituitaire du poisson,
appelée hypophyse, pendant leur passage au stade de la maturité sexuelle (FAO, 2010).
Cette petite glande pituitaire se trouve dans la partie supérieure de la tête du poisson, (sur
le côté ventral du cerveau. La collecte de ces glandes prélevées sur des poissons parvenus à
maturité ne pose aucune difficulté, de même que leur stockage en vue d'une utilisation
ultérieure, si nécessaire, et l'extraction des hormones gonadotropes qu'elles contiennent.
1 – Enlever la partie supérieure de la boîte
crânienne à un angle de 90˚ derrière les yeux, au
moyen d'une scie ou d'un couteau bien aiguisé.
2 – Repérer l'emplacement de la glande pituitaire
dans la masse cérébrale et l’extraire soigneusement
au moyen de pinces.
90˚
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Figure 28 : Récolte des glandes pituitaires par sectionnement de la tête d’une carpe
lors du stage pratique de la 4
ème année au niveau d’EL KALA.