Matériel et méthodes
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En suivant ces étapes (fig.II.16) :
 Après une bonne agitation du ballon, 1 ml de la solution algale est prélevé avec une
pipette puis diluer 10 fois avec de l’eau de mer.
 Avec une pipette pasteur, prélever une goutte de la solution diluée et la disposer sur la
cellule Malassez.
 Placer la cellule sous microscope à l’objectif ×10 pour bien repérer la cellule. Attendre
une à deux minutes pour la stabilisation des cellules. Le comptage est effectué à l’objectif
×10 en utilisant un compteur.
 On répète cette opération trois fois pour chaque ballon.
Le matériel doit être rincé à l’eau du robinet avant et après chaque utilisation
6. Culture des rotifères
Le choix de Brachionus plicatilis est effectué vu sa disponibilité dans l’écloserie et son efficacité
pour les larves des poissons.
Pour maintenir les rotifères en vie et en phase logarithmique, l’inoculation est nécessaire chaque
cinq jours.
Le matériel est désinfecté avant et après chaque inoculation.
Les bassins sont vidés tout en filtrant les cultures afin de piéger les rotifères. La taille des mailles
de filtre à utiliser est selon la taille des rotifères.
Les rotifères sont inoculés dans 200 l de Chlorella et 100 l d’eau douce. L’eau douce est ajoutée
pour réguler la salinité qui a augmenté à cause de l’évaporation de l’eau des bassins de chlorelle
placés à l’extérieur (fig.II.17).
Figure II-16: Etapes réalisées pour le comptage. A: Prélèvement de un ml de la souche mer
liquide ; B : Dilution de la souche prélever et prélèvement d’une goutte de cette dernière ;
C : Déposition de cette goutte sur la cellule Malassez.