Matériel et méthodes
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La culture des micro-algues est effectuée sur les deux milieux de culture afin de comparer leur
effet sur leur croissance pour minimiser le coût de production.
Le choix s’est porté sur Chlorella ellipsoïdea vu sa disponibilité au niveau de l’écloserie et son
efficacité pour la production des rotifères.
Les conditions de la culture
Les micro-algues bénéficiaient de la lumière artificielle d’une façon continue 24h/24h assurée
par des néons placés en face des ballons de culture.
Un climatiseur maintient la température de la salle à 25°C.
L’agitation des cultures est assurée par des diffuseurs d’aire à une vitesse moyenne.
5. Inoculation de Chlorella ellipsoïdae
L’inoculation correspond à la phase d’ensemencement du milieu de culture avec des microalgues (SALOMEZ, 2009).
Le matériel utilisé dans cette expérience est lavés avec une eau désinfectée et stérilisée au pare
avant.
Les trois ballons sont remplis avec 600 ml d’eau de mer stérilisée. Un ml de milieu I (f/2), un ml
de vitamines (Chlorhydrate de thiamine (vitamine B1), Vitamine B12 et Biotine) ont été ajoutés
et 300 ml de la souche mère de la chlorelle liquide sont versés.
Les trois autres ballons sont remplis avec 600 ml d’eau de mer stérilisée à laquelle trois ml du
milieu II (NPK) et trois ml (NH4)2SO4 (Sulfate d’ammonium) sont ajoutés. 300 ml de la souche
mère de la chlorelle liquide sont versés.
Un diffuseur d’air est placé dans chaque ballon, fermé avec du coton pour éviter le maximum de
contamination et placer le tout sur les étagères du laboratoire. Les étapes sont illustrées parla
figure (fig.II.12) et le schéma (fig.II.13).
Figure II-12 : Préparation des cultures ; A : Remplissage des ballons avec 600 ml de l’eau
désinfecté ; B : L’ajout des milieux de cultures ; C : L’ajout de 300 ml de la souche
liquide de Chlorella ellipsoïdae ; D : Placement des diffuseurs et du couton.
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La culture des micro-algues est effectuée sur les deux milieux de culture afin de comparer leur
effet sur leur croissance pour minimiser le coût de production.
Le choix s’est porté sur Chlorella ellipsoïdea vu sa disponibilité au niveau de l’écloserie et son
efficacité pour la production des rotifères.
Les conditions de la culture
Les micro-algues bénéficiaient de la lumière artificielle d’une façon continue 24h/24h assurée
par des néons placés en face des ballons de culture.
Un climatiseur maintient la température de la salle à 25°C.
L’agitation des cultures est assurée par des diffuseurs d’aire à une vitesse moyenne.
5. Inoculation de Chlorella ellipsoïdae
L’inoculation correspond à la phase d’ensemencement du milieu de culture avec des microalgues (SALOMEZ, 2009).
Le matériel utilisé dans cette expérience est lavés avec une eau désinfectée et stérilisée au pare
avant.
Les trois ballons sont remplis avec 600 ml d’eau de mer stérilisée. Un ml de milieu I (f/2), un ml
de vitamines (Chlorhydrate de thiamine (vitamine B1), Vitamine B12 et Biotine) ont été ajoutés
et 300 ml de la souche mère de la chlorelle liquide sont versés.
Les trois autres ballons sont remplis avec 600 ml d’eau de mer stérilisée à laquelle trois ml du
milieu II (NPK) et trois ml (NH4)2SO4 (Sulfate d’ammonium) sont ajoutés. 300 ml de la souche
mère de la chlorelle liquide sont versés.
Un diffuseur d’air est placé dans chaque ballon, fermé avec du coton pour éviter le maximum de
contamination et placer le tout sur les étagères du laboratoire. Les étapes sont illustrées parla
figure (fig.II.12) et le schéma (fig.II.13).
Figure II-12 : Préparation des cultures ; A : Remplissage des ballons avec 600 ml de l’eau
désinfecté ; B : L’ajout des milieux de cultures ; C : L’ajout de 300 ml de la souche
liquide de Chlorella ellipsoïdae ; D : Placement des diffuseurs et du couton.