Chapitre III
Matériels et méthodes
31
III. Fixation
Une fois récolté, le microplancton est fixé en attendant l’identification et le comptage des
organismes. Cette fixation se fait avec du Lugol (Utermöhl, 1958) ; qui s’effectue en ajoutant
du liquide de Lugol aux échantillons d’eau de mer pour obtenir une couleur brune faible
(Willèn, 1976 ; Travers, 1971 in Fereidoun, 1982), ce dernier est un réactif iodo-ioduré qui
assure la conservation du microplancton et alourdit les cellules. Par conséquent, leur
sédimentation devient plus facile. Ce réactif colore également l’amidon des cellules. Il rend
leur identification plus aisée.
IV. Méthode d’étude
IV.1.Analyse des échantillons
On met notre échantillon dans une bouteille étiquetée de 1000 ml et on les conserve à l’abri de
la lumière et de la chaleur.
IV.2.Homogénéisation de l’échantillon
Le traitement de l’échantillon a débuté par une agitation modérée à fin de remettre en
suspension les organismes microplanctoniques et pour assurer la répartition homogène dans la
bouteille. L’agitation est faite manuellement pendant une 15aine de secondes, et comprend
une15aine de mouvements verticaux et horizontaux. Cette agitation ne doit pas être trop
vigoureuse de façon à ne pas entraîner la désintégration des colonies fragiles.
IV.3.Préparation du sous-échantillon
Immédiatement après l’homogénéisation de l’échantillon, on verse 150 ml dans une
éprouvette étiquetée et on laisse décanter pendant 24 h après cette décantation on élimine le
surnagent à l’aide d’un tuyau et une seringue, on conserve environ 25 ml dans l’éprouvette
(Figure 7); ensuite on verse ce sous-échantillon dans un pilulier étiqueté (Figure 8).
Figure 7 : élimination de surnagent
Figure 8 : pilulier contenant un
échantillon a analysée
Matériels et méthodes
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III. Fixation
Une fois récolté, le microplancton est fixé en attendant l’identification et le comptage des
organismes. Cette fixation se fait avec du Lugol (Utermöhl, 1958) ; qui s’effectue en ajoutant
du liquide de Lugol aux échantillons d’eau de mer pour obtenir une couleur brune faible
(Willèn, 1976 ; Travers, 1971 in Fereidoun, 1982), ce dernier est un réactif iodo-ioduré qui
assure la conservation du microplancton et alourdit les cellules. Par conséquent, leur
sédimentation devient plus facile. Ce réactif colore également l’amidon des cellules. Il rend
leur identification plus aisée.
IV. Méthode d’étude
IV.1.Analyse des échantillons
On met notre échantillon dans une bouteille étiquetée de 1000 ml et on les conserve à l’abri de
la lumière et de la chaleur.
IV.2.Homogénéisation de l’échantillon
Le traitement de l’échantillon a débuté par une agitation modérée à fin de remettre en
suspension les organismes microplanctoniques et pour assurer la répartition homogène dans la
bouteille. L’agitation est faite manuellement pendant une 15aine de secondes, et comprend
une15aine de mouvements verticaux et horizontaux. Cette agitation ne doit pas être trop
vigoureuse de façon à ne pas entraîner la désintégration des colonies fragiles.
IV.3.Préparation du sous-échantillon
Immédiatement après l’homogénéisation de l’échantillon, on verse 150 ml dans une
éprouvette étiquetée et on laisse décanter pendant 24 h après cette décantation on élimine le
surnagent à l’aide d’un tuyau et une seringue, on conserve environ 25 ml dans l’éprouvette
(Figure 7); ensuite on verse ce sous-échantillon dans un pilulier étiqueté (Figure 8).
Figure 7 : élimination de surnagent
Figure 8 : pilulier contenant un
échantillon a analysée