Matériel et méthodes
25
II-2 L’échantillonnage
Un échantillonnage journalier a été réalisé entre le mois d’avril et mois de mai 2015, à l’aide d’un
filet à plancton d’un maillage de 20 ɥm (afin de capturer les espèces les plus rares) (Sournia,
1986)(Figure 09), et d’un seau en plastique de 10Lpour l’étude quantitative du phytoplancton.
Les prélèvements ont été effectués au niveau de deux stations pré du site «le vivier» et «Trois
Suisses», Les échantillons ont été transportés directement au laboratoire sans fixation où on a
effectué immédiatement les analyses quantitatives et qualitatives sous microscope
photonique(Figure 10), on commence par le plus faible grossissement puis on passe au plus grand.
L’identification des espècesphytoplanctoniques collectées est réalisée à l’aide de clefs de
détermination de (Brientet al, 2001), (Nelsan et G Piclet, Carmelo R.Tomas. Karen H, Wiltshire et
Maarten Boersma, Tregouboff et Rose 1957).
II-3 Etude qualitative du phytoplancton
Pour l’échantillonnage qualitatif, un filet à phytoplancton d’un diamètre de 20 cm pour une
longueur de 35 cm a été utilisé. La pointe de ce filet se termine par un robinet d’arrêtl‘embouchure
du filet est garnie d’un collet de toile de 50ml, attaché à la ligne d’échantillonnage.
On mouille le filet à une profondeur de 2 à 3m et après un intervalle de 15 à 30 secondes
nécessaires, pour qu’il se stabilise : on le tire lentement sur 5 mètres à une profondeur de 2 à 3m de
la surface. L’embouchure du robinet est placée au-dessus d’une bouteille de collecte d’échantillon,
dans laquelle le contenu du filet sera vidé. Cette procédure pourra être répétée trois à quartes fois.
L’échantillonnage ainsi réalisé, renseignera sur la présence ou l’absence d’espèces et pourra aider à
repérer des espèces rares. De nombreuses espèces ou individus peuvent échapper aux filets les plus
fins.Des colonies peuvent êtres perturbées par le filet et certaines espèces fragiles pourront éclater
suite à une pression excessive.
Toutefois les échantillons sont excellents aux fins d’études taxinomiques, à cause du grand nombre
de spécimens recueillis (Findlay et Kling, 1995).
Pour l’étude qualitative, l’identification des espèces des échantillons (récoltés par filtration inverse
sur filet à plancton de 20 µm de vide de mailles), a été faite au microscopie optique inversée et elle
permet l’observation d’échantillons sédimentés, l’identification et le comptage des cellules
phytoplanctoniques (Utermöhl, 1931) (Figure 10), avec une caméra numérique MA88-300, aux
grossissement 10, 40 et 100 selon les espèces on utilisant les clés de détermination citer dans le
paragraphe précédent.
25
II-2 L’échantillonnage
Un échantillonnage journalier a été réalisé entre le mois d’avril et mois de mai 2015, à l’aide d’un
filet à plancton d’un maillage de 20 ɥm (afin de capturer les espèces les plus rares) (Sournia,
1986)(Figure 09), et d’un seau en plastique de 10Lpour l’étude quantitative du phytoplancton.
Les prélèvements ont été effectués au niveau de deux stations pré du site «le vivier» et «Trois
Suisses», Les échantillons ont été transportés directement au laboratoire sans fixation où on a
effectué immédiatement les analyses quantitatives et qualitatives sous microscope
photonique(Figure 10), on commence par le plus faible grossissement puis on passe au plus grand.
L’identification des espècesphytoplanctoniques collectées est réalisée à l’aide de clefs de
détermination de (Brientet al, 2001), (Nelsan et G Piclet, Carmelo R.Tomas. Karen H, Wiltshire et
Maarten Boersma, Tregouboff et Rose 1957).
II-3 Etude qualitative du phytoplancton
Pour l’échantillonnage qualitatif, un filet à phytoplancton d’un diamètre de 20 cm pour une
longueur de 35 cm a été utilisé. La pointe de ce filet se termine par un robinet d’arrêtl‘embouchure
du filet est garnie d’un collet de toile de 50ml, attaché à la ligne d’échantillonnage.
On mouille le filet à une profondeur de 2 à 3m et après un intervalle de 15 à 30 secondes
nécessaires, pour qu’il se stabilise : on le tire lentement sur 5 mètres à une profondeur de 2 à 3m de
la surface. L’embouchure du robinet est placée au-dessus d’une bouteille de collecte d’échantillon,
dans laquelle le contenu du filet sera vidé. Cette procédure pourra être répétée trois à quartes fois.
L’échantillonnage ainsi réalisé, renseignera sur la présence ou l’absence d’espèces et pourra aider à
repérer des espèces rares. De nombreuses espèces ou individus peuvent échapper aux filets les plus
fins.Des colonies peuvent êtres perturbées par le filet et certaines espèces fragiles pourront éclater
suite à une pression excessive.
Toutefois les échantillons sont excellents aux fins d’études taxinomiques, à cause du grand nombre
de spécimens recueillis (Findlay et Kling, 1995).
Pour l’étude qualitative, l’identification des espèces des échantillons (récoltés par filtration inverse
sur filet à plancton de 20 µm de vide de mailles), a été faite au microscopie optique inversée et elle
permet l’observation d’échantillons sédimentés, l’identification et le comptage des cellules
phytoplanctoniques (Utermöhl, 1931) (Figure 10), avec une caméra numérique MA88-300, aux
grossissement 10, 40 et 100 selon les espèces on utilisant les clés de détermination citer dans le
paragraphe précédent.