Annexe 4
2. Matériel et produits de laboratoire
 Aquariums de divers volumes (50 L ; 150 L ; 200 L)
 Trousse à dissection,
 Bacs à dissection,
 Piluliers pour la conservation des parasites,
 Boites de Petri en verre,
 Lames et lamelles,
 Pipettes Pasteur avec poire d’aspiration
 Verres à montre,
 Pinceaux fins à poils pour le prélèvement de parasites métazoaires de petites tailles,
 Loupe binoculaire Olympus SZH-10,
 Microscope optique Leica DM 2000 équipé de tube à dessin et d’une caméra numérique,
 Balance (Max 5kg ; précision ± 1 gr),
 Anesthésique Méthasulfonate de Tricaine (appelé aussi MS-222 ou
FinquelND)
 Fixateurs : Formaldéhyde à 10%, éthanol 70°, Acide Acétique Glacial,
 Colorants : Bleu de méthylène, Hématoxyline, ou Carmin Boracique,
 Solutions d’éthanol à différentes concentrations 70°, 80°, 90° et éthanol
absolu (100%),
 Xylène, Toluène, Acide acétique glacial, Méthyle Salicylate,
 Baume de Canada.
3. Protocoles de dissection
Au laboratoire, les poissons sont placés dans des aquariums et maintenus vivants jusqu’au
moment de la dissection (fig.06). Quelques paramètres morphométriques sont relevés pour
chaque spécimen (Longueur Totale (LT), âge, poids). L’âge des poissons est estimé par
scalimétrie. Les écailles seront prélevées au niveau antérieur sous la nageoire pectorale ou à
proximité de la ligne latérale.
Après nettoyage à l’eau de Javel, elles sont placées entre lames et lamelles et observées sous
microscope à faible grossissement. La détermination de l’âge est basée sur le dénombrement des
groupes de stries les plus sombres correspondant à chaque période hivernale.
Figure annexe 07 : Dissection de Barbus callensis pour une investigation parasitaire.