Matériels et méthodes
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o Bouteille Niskin.
o Des flacons : Des bouteilles en plastique (polyéthylène) de 1 L et 1,5 L.
o GPS : Pour localiser très précisément les sites avant les tournées de prélèvement.
o Des glaciaires avec packs de glace : Pour conservation des échantillons.
o Une embarcation pour les prélèvements côtiers.
3.5. Echantillonnage et conservation
Les flacons sont désignés par une étiquette qui porte l’origine de l’échantillon et la profondeur
dans laquelle il a été prélevé. Ils sont ensuite conservés avec les flacons des sels nutritifs et du
MES à baisse température dans une glacière portative avec « packs » de froid assurant une
température faible. La filtration pour la chlorophylle et la MES est faite dès le retour au
laboratoire. Les flacons destinés à l’analyse des sels nutritifs sont conservés dans un
congélateur pour une analyse ultérieure.
3.6. Méthodes d’analyses :
3.6.1. Les paramètres physico-chimiques
Les mesures des paramètres physico-chimiques (température, salinité, turbidité et de
l’oxygène dissous) ont été effectuées in situ pour chaque station de prélèvement à l’aide d’une
valise multi paramètre HANNA HI9828 pH/ORP/DO (Annexe 1). Cet appareil est muni des
sondes électrolytiques.
o Les valeurs de l’oxygène dissous s’affichent en mg /l avec une exactitude de
±1,5% à ±3%.
o Les valeurs de la température s’affichent en °C avec une exactitude ±0,15°C.
o Les valeurs de la salinité s’affichent en PSU avec une exactitude ±2%.
o Les valeurs de la turbidité s’affichent en NTU.
La calibration de l’appareil sert à corriger les valeurs, elle est effectuée par une solution
unique (HI 9828 – 25).
3.6.2. Matières en suspension (MES)
La mesure des matières en suspension se fait par filtration, cette méthode est basée sur le
passage d'un échantillon d'eau de volume V à travers un filtre en fibre de verre de 0,45 µm. Le
poids de matière retenu par le filtre, noté P est déterminé par pesée différentielle (avant et
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o Bouteille Niskin.
o Des flacons : Des bouteilles en plastique (polyéthylène) de 1 L et 1,5 L.
o GPS : Pour localiser très précisément les sites avant les tournées de prélèvement.
o Des glaciaires avec packs de glace : Pour conservation des échantillons.
o Une embarcation pour les prélèvements côtiers.
3.5. Echantillonnage et conservation
Les flacons sont désignés par une étiquette qui porte l’origine de l’échantillon et la profondeur
dans laquelle il a été prélevé. Ils sont ensuite conservés avec les flacons des sels nutritifs et du
MES à baisse température dans une glacière portative avec « packs » de froid assurant une
température faible. La filtration pour la chlorophylle et la MES est faite dès le retour au
laboratoire. Les flacons destinés à l’analyse des sels nutritifs sont conservés dans un
congélateur pour une analyse ultérieure.
3.6. Méthodes d’analyses :
3.6.1. Les paramètres physico-chimiques
Les mesures des paramètres physico-chimiques (température, salinité, turbidité et de
l’oxygène dissous) ont été effectuées in situ pour chaque station de prélèvement à l’aide d’une
valise multi paramètre HANNA HI9828 pH/ORP/DO (Annexe 1). Cet appareil est muni des
sondes électrolytiques.
o Les valeurs de l’oxygène dissous s’affichent en mg /l avec une exactitude de
±1,5% à ±3%.
o Les valeurs de la température s’affichent en °C avec une exactitude ±0,15°C.
o Les valeurs de la salinité s’affichent en PSU avec une exactitude ±2%.
o Les valeurs de la turbidité s’affichent en NTU.
La calibration de l’appareil sert à corriger les valeurs, elle est effectuée par une solution
unique (HI 9828 – 25).
3.6.2. Matières en suspension (MES)
La mesure des matières en suspension se fait par filtration, cette méthode est basée sur le
passage d'un échantillon d'eau de volume V à travers un filtre en fibre de verre de 0,45 µm. Le
poids de matière retenu par le filtre, noté P est déterminé par pesée différentielle (avant et