Contents
1 Exploring Cell Interactions of Dendritic and Protein Polyelectrolytes . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 213
1.1 Introduction . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 213
1.2 Polycationic and Polyanionic Core–Shell Polyphenylene Dendrimers . . . . . . . . . . . . . 214
1.3 Polycationic Serum Albumin Proteins for Gene Delivery . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 218
1.4 Albumin Copolymer Polyelectrolytes Allow Efficient Drug Delivery . . . . . . . . . . . . . . 222
1.5 Conclusions . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 224
2 Gene Transfection Utilizing Cationic Cylindrical Brush Polymers . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 225
2.1 Introduction . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 225
2.2 Polymers for Transfection . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 226
2.3 Brush Polymer Synthesis and DNA Complexation . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 227
2.4 Transfection with Brush Polymers . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 229
2.5 Conclusions . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 230
References . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 231
Abbreviations
AML
Acute myeloid leukemia
ATRP
Atom transfer radical polymerization
cBSA
Cationized bovine serum albumin
DHSA
Dendronized human serum albumin
DMF
Dimethyl formamide
DOX
Doxorubicin
ECM
Extracellular matrix
EPR
Enhanced retention and permeation
GFP
Green fluorescent protein
HSA
Human serum albumin
LiBr
Lithium bromide
MRI
Magnetic resonance imaging
M w
Weight-average molecular weight
NaCl
Sodium chloride
PAMAM Polyamidoamine
PBMEC
Porcine microvascular endothelial cells
PDI
Perylene-3,4,9,10-tetracarboxdiimide
PEG
Poly(ethylene glycol)
PEI
Poly(ethylene imine)
PEO
Poly(ethylene oxide)
PLL
Poly-L-lysine
P n
Number-average degree of polymerization
P w
Weight-average degree of polymerization
R g
Radius of gyration
R h
Hydrodynamic radius
212
J. Hedrich et al.
1 Exploring Cell Interactions of Dendritic and Protein Polyelectrolytes . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 213
1.1 Introduction . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 213
1.2 Polycationic and Polyanionic Core–Shell Polyphenylene Dendrimers . . . . . . . . . . . . . 214
1.3 Polycationic Serum Albumin Proteins for Gene Delivery . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 218
1.4 Albumin Copolymer Polyelectrolytes Allow Efficient Drug Delivery . . . . . . . . . . . . . . 222
1.5 Conclusions . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 224
2 Gene Transfection Utilizing Cationic Cylindrical Brush Polymers . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 225
2.1 Introduction . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 225
2.2 Polymers for Transfection . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 226
2.3 Brush Polymer Synthesis and DNA Complexation . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 227
2.4 Transfection with Brush Polymers . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 229
2.5 Conclusions . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 230
References . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 231
Abbreviations
AML
Acute myeloid leukemia
ATRP
Atom transfer radical polymerization
cBSA
Cationized bovine serum albumin
DHSA
Dendronized human serum albumin
DMF
Dimethyl formamide
DOX
Doxorubicin
ECM
Extracellular matrix
EPR
Enhanced retention and permeation
GFP
Green fluorescent protein
HSA
Human serum albumin
LiBr
Lithium bromide
MRI
Magnetic resonance imaging
M w
Weight-average molecular weight
NaCl
Sodium chloride
PAMAM Polyamidoamine
PBMEC
Porcine microvascular endothelial cells
PDI
Perylene-3,4,9,10-tetracarboxdiimide
PEG
Poly(ethylene glycol)
PEI
Poly(ethylene imine)
PEO
Poly(ethylene oxide)
PLL
Poly-L-lysine
P n
Number-average degree of polymerization
P w
Weight-average degree of polymerization
R g
Radius of gyration
R h
Hydrodynamic radius
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J. Hedrich et al.