CHAPITRE 2 : MATERIEL ET METHODES
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décapsulés, divisée par deux, permet de déterminer l'épaisseur du chorion (Vanhaecke &
Sorgeloos, 1980).
D = (A-a) / 2
Où :
D : Épaisseur du chorion (µm)
A : Diamètre des cystes hydratés non décapsulés (µm)
a : Diamètre des cystes décapsulés parés hydratation (µm)
7.2 Biométrie des Nauplii
La longueur totale des nauplii a été mesurée sur 30 nauplii fraîchement éclos, fixés au Lugol.
8. Élevage
Pour la récolte, il suffit de couper l'arrivée d'air et de laisser reposer le mélange pendant
environ 15 à 30 minutes. Une partie de la bouteille est couverte avec du sachet noir et le reste
est exposé à la lumière afin d’attirer les nauplii. La récolte est effectuée par siphonage dans la
partie exposée à la lumière (Figure 13).
Les nauplii récoltés sont mis en élevage selon le protocole de Chabet dis (2023) adapté
du protocole de Hontoria et Amat (1992) avec une mise charge de 0,1 individu/mL et une
alimentation micro-algale avec une concentration de 1,2*10
5 cell/mL (Figure 14).
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décapsulés, divisée par deux, permet de déterminer l'épaisseur du chorion (Vanhaecke &
Sorgeloos, 1980).
D = (A-a) / 2
Où :
D : Épaisseur du chorion (µm)
A : Diamètre des cystes hydratés non décapsulés (µm)
a : Diamètre des cystes décapsulés parés hydratation (µm)
7.2 Biométrie des Nauplii
La longueur totale des nauplii a été mesurée sur 30 nauplii fraîchement éclos, fixés au Lugol.
8. Élevage
Pour la récolte, il suffit de couper l'arrivée d'air et de laisser reposer le mélange pendant
environ 15 à 30 minutes. Une partie de la bouteille est couverte avec du sachet noir et le reste
est exposé à la lumière afin d’attirer les nauplii. La récolte est effectuée par siphonage dans la
partie exposée à la lumière (Figure 13).
Les nauplii récoltés sont mis en élevage selon le protocole de Chabet dis (2023) adapté
du protocole de Hontoria et Amat (1992) avec une mise charge de 0,1 individu/mL et une
alimentation micro-algale avec une concentration de 1,2*10
5 cell/mL (Figure 14).