CHAPITRE IV
89
Du formol est injecté dans les bouteilles d’incubation, tous les 04 heures à une concentration
de 2‰, durant toute la phase d’incubation, pour prévenir la propagation des champignons.
Après éclosion complète, le nombre de larves dans les boites d’élevage larvaire est déterminé
par un comptage manuel pour estimer le taux d’éclosion. Après 05 jours post-éclosion, les
larves sont comptées manuellement afin de déterminer le taux de survie durant la phase
lécithotrophique.
La mise en place d’unité d’incubation en circuit ouvert et l’injection régulière du formol dans
le circuit d’eau a permis de réduire la prolifération des champignons et d’améliorer
considérablement les taux de survie au sein des œufs et des larves.
Figure 46. Unité d’incubation en circuit ouvert
1.2.4. Echantillonnages et biométrie
A partir de chaque ponte, des échantillons de 15 œufs, 15 larves à l’éclosion et 15 larves à la
fin de la phase lécithotrophique sont prélevés et fixés dans une solution de formol à 4% (de
Oliveira et al., 2014) pour réaliser ultérieurement les mesures biométriques.
La biométrie des œufs et des larves (fig.47 et 48) est effectuée à l’aide du microscope équipé
d’une caméra (CMEX-1 DC.1300c), en utilisant le logiciel ImageFocus 4. La calibration des
mesures pour chaque grossissement est réalisée à l’aide d’une lame micrométrique graduée. La
longueur totale des larves à J0 (jour de l’éclosion) et à J5 (5 jours post-éclosion) est mesurée en
micromètres.
Pour les œufs, la plus grande longueur (axe1) et la plus petite longueur (axe2) sont mesurées
pour déterminer le diamètre et le volume moyens des œufs selon les formules
suivantes (Coward & Bromage, 1999) :
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Du formol est injecté dans les bouteilles d’incubation, tous les 04 heures à une concentration
de 2‰, durant toute la phase d’incubation, pour prévenir la propagation des champignons.
Après éclosion complète, le nombre de larves dans les boites d’élevage larvaire est déterminé
par un comptage manuel pour estimer le taux d’éclosion. Après 05 jours post-éclosion, les
larves sont comptées manuellement afin de déterminer le taux de survie durant la phase
lécithotrophique.
La mise en place d’unité d’incubation en circuit ouvert et l’injection régulière du formol dans
le circuit d’eau a permis de réduire la prolifération des champignons et d’améliorer
considérablement les taux de survie au sein des œufs et des larves.
Figure 46. Unité d’incubation en circuit ouvert
1.2.4. Echantillonnages et biométrie
A partir de chaque ponte, des échantillons de 15 œufs, 15 larves à l’éclosion et 15 larves à la
fin de la phase lécithotrophique sont prélevés et fixés dans une solution de formol à 4% (de
Oliveira et al., 2014) pour réaliser ultérieurement les mesures biométriques.
La biométrie des œufs et des larves (fig.47 et 48) est effectuée à l’aide du microscope équipé
d’une caméra (CMEX-1 DC.1300c), en utilisant le logiciel ImageFocus 4. La calibration des
mesures pour chaque grossissement est réalisée à l’aide d’une lame micrométrique graduée. La
longueur totale des larves à J0 (jour de l’éclosion) et à J5 (5 jours post-éclosion) est mesurée en
micromètres.
Pour les œufs, la plus grande longueur (axe1) et la plus petite longueur (axe2) sont mesurées
pour déterminer le diamètre et le volume moyens des œufs selon les formules
suivantes (Coward & Bromage, 1999) :