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Chapitre III
Résultats et discussion
microalgues. Des études ont montré que les microalgues ont leur propre salinité de croissance
optimale, lorsque la salinité est supérieure ou inférieure à celle-ci, le taux de croissance des
microalgues diminuera considérablement (Besson et al, 2013). Le degré de salinité permet de
classer l'eau selon les catégories suivantes : eau douce à saumâtre (0,5 à 5 PSU), eau saumâtre
à salée (18 à 30 PSU) et eau salée (> 30 PSU) (Hecker et al, 1996). Les échantillons de la STEP
de Chenoua sont donc classés comme eau douce, tandis que l’échantillon de ferme marine du
CNRDPA est classé comme dans la catégorie des eaux saumâtre à salée. Les teneurs d’oxygène
dissous du décanteur et du bassin biologique de la STEP sont très basses par rapport
auxindications réglementaires (> 7mg/L) (Mehimeh et al, 2005). Elle peut s’expliquer par la
diminution de l’intensité de la photosynthèse, qui est causée par la diminution de la biomasse
végétale pendant cette période froide (mois de mars) et des facteurs climatiques défavorables
(Gaujous, 1995).Les échantillons de la STEP et celui de la ferme du CNRDPA présentent un
pH favorable à la vie aquatique en général (6,5 - 8,5) et considérés comme un environnement
favorable au développement des microalgues (Sigg et al., 2006).La concentration de MES est
très élevée dans le bassin biologique suivie par le bassin de CNRDPA puis le décanteur, à cause
du systèmes d’épuration (à boues activées) dans le bassin biologique (qui re-circule une partie
des boues décantées dans l’aérateur biologique). Pour le bassin du CNRDPA, les eaux rejetées
sont considérées comme eaux usées brutes (sans traitement), elles sont donc logiquement
chargées en MES. La concentration élevée en MES des échantillons est en partie, responsable
du taux d’oxygène dissous rencontré. Néanmoins, pour des fins d’isolement de
microorganismes, les échantillons d’eaux chargées en MES peuvent constituer un support
adéquat permettant d’attacher les microalgues par mécanismes d’adsorption. Zhang et al.,
(2013) a réussi à isoler des microalgues à partir d’un biofilm de boues activées attaché aux murs
de l’aérateur biologique d’une STEP. Par rapport aux éléments azotés et phosphorés, nous
remarquons que l’échantillon du bassin biologique de la STEP de Chenoua est relativement
pauvre de tous les éléments à l’exception de NH4 et NT. L’échantillon du décanteur est aussi
caractérisé par de faibles concentrations de tous les composés azotés et phosphorés, tandis que
l’échantillon de la ferme du CNRDPA est très riche en SiO2 et relativement pauvre en autres
éléments. Des concentrations équilibrées en N et P augmentent la chance de réussir l’isolement
des microalgues, alors que des eaux riches en silicates pourront constituer un environnement
favorable au développement des diatomées.
Chapitre III
Résultats et discussion
microalgues. Des études ont montré que les microalgues ont leur propre salinité de croissance
optimale, lorsque la salinité est supérieure ou inférieure à celle-ci, le taux de croissance des
microalgues diminuera considérablement (Besson et al, 2013). Le degré de salinité permet de
classer l'eau selon les catégories suivantes : eau douce à saumâtre (0,5 à 5 PSU), eau saumâtre
à salée (18 à 30 PSU) et eau salée (> 30 PSU) (Hecker et al, 1996). Les échantillons de la STEP
de Chenoua sont donc classés comme eau douce, tandis que l’échantillon de ferme marine du
CNRDPA est classé comme dans la catégorie des eaux saumâtre à salée. Les teneurs d’oxygène
dissous du décanteur et du bassin biologique de la STEP sont très basses par rapport
auxindications réglementaires (> 7mg/L) (Mehimeh et al, 2005). Elle peut s’expliquer par la
diminution de l’intensité de la photosynthèse, qui est causée par la diminution de la biomasse
végétale pendant cette période froide (mois de mars) et des facteurs climatiques défavorables
(Gaujous, 1995).Les échantillons de la STEP et celui de la ferme du CNRDPA présentent un
pH favorable à la vie aquatique en général (6,5 - 8,5) et considérés comme un environnement
favorable au développement des microalgues (Sigg et al., 2006).La concentration de MES est
très élevée dans le bassin biologique suivie par le bassin de CNRDPA puis le décanteur, à cause
du systèmes d’épuration (à boues activées) dans le bassin biologique (qui re-circule une partie
des boues décantées dans l’aérateur biologique). Pour le bassin du CNRDPA, les eaux rejetées
sont considérées comme eaux usées brutes (sans traitement), elles sont donc logiquement
chargées en MES. La concentration élevée en MES des échantillons est en partie, responsable
du taux d’oxygène dissous rencontré. Néanmoins, pour des fins d’isolement de
microorganismes, les échantillons d’eaux chargées en MES peuvent constituer un support
adéquat permettant d’attacher les microalgues par mécanismes d’adsorption. Zhang et al.,
(2013) a réussi à isoler des microalgues à partir d’un biofilm de boues activées attaché aux murs
de l’aérateur biologique d’une STEP. Par rapport aux éléments azotés et phosphorés, nous
remarquons que l’échantillon du bassin biologique de la STEP de Chenoua est relativement
pauvre de tous les éléments à l’exception de NH4 et NT. L’échantillon du décanteur est aussi
caractérisé par de faibles concentrations de tous les composés azotés et phosphorés, tandis que
l’échantillon de la ferme du CNRDPA est très riche en SiO2 et relativement pauvre en autres
éléments. Des concentrations équilibrées en N et P augmentent la chance de réussir l’isolement
des microalgues, alors que des eaux riches en silicates pourront constituer un environnement
favorable au développement des diatomées.