POLLUANTS ORGANIQUES
chouc sont à proscrire pour éviter les contaminations. Le bouchon en verre
rodé sans graisse est peu commode dans le cas d’un transport prolongé (grippage). Le bouchon en bakélite vissé avec un disque d’étanchéité en téflon est
recommandé.
3.3. PRÉ-TRAITEMENT DES ÉCHANTILLONS D’EAU
Il est souhaitable d’effectuer immédiatement une première extraction
des hydrocarbures directement dans la bouteille de prélèvement. Il est conseillé
d'utiliser un solvant organique plus dense que l’eau : tétrachlorure de carbone
(CC14), chloroforme (CHC13), dichlorométhane (CH2C12). Après la remontée
de l’échantillon à bord, rejeter un peu d’eau de la bouteille si celle-ci est trop
pleine et y ajouter 50 ml de solvant d’extraction, puis secouer énergiquement
la bouteille pendant trois minutes pour disperser le solvant dans l’eau.
3.4. PRÉPARATION DES ÉCHANTILLONS D’ORGANISMES MARINS
L’analyse des prélèvements d’organismes marins nécessite la constitution d’échantillons de chair selon les indications du chapitre XX, paragraphe 2.
4. CONSERVATION
Les échantillons d’eau peuvent être conservés avec leur premier solvant
d’extraction, dans les flacons d’échantillonnage, avant l’analyse finale en
laboratoire.
Les organismes marins sont placés dans des feuilles en papier d’aluminium et conservés congelés avant leur analyse. Après la lyophilisation on
peut également conserver les poudres obtenues pendant environ 1 mois, délai
qu'il n’est pas souhaitable de dépasser.
5. APPAREILLAGE
Appareillage commun :
. Evaporateur rotatif.
. Concentrateur sous jet d’air ou d’azote purifiés.
. Spectrofluorimètre équipé de cuves en quartz de 1 cm de trajet optique.
Matériel complémentaire pour l’eau de mer :
. Ampoules à décanter de 2 1.
. Flacons en verre de 200 ml.
. Eprouvettes de 100 ml.
. Tubes gradués de 15 ml.
Appareillage pour les organismes marins :
. Lyophilisateur et (ou) étuve.
. Extracteur Soxhlet ou homogénéiseur de type virtis.
. Centrifugeuse.
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chouc sont à proscrire pour éviter les contaminations. Le bouchon en verre
rodé sans graisse est peu commode dans le cas d’un transport prolongé (grippage). Le bouchon en bakélite vissé avec un disque d’étanchéité en téflon est
recommandé.
3.3. PRÉ-TRAITEMENT DES ÉCHANTILLONS D’EAU
Il est souhaitable d’effectuer immédiatement une première extraction
des hydrocarbures directement dans la bouteille de prélèvement. Il est conseillé
d'utiliser un solvant organique plus dense que l’eau : tétrachlorure de carbone
(CC14), chloroforme (CHC13), dichlorométhane (CH2C12). Après la remontée
de l’échantillon à bord, rejeter un peu d’eau de la bouteille si celle-ci est trop
pleine et y ajouter 50 ml de solvant d’extraction, puis secouer énergiquement
la bouteille pendant trois minutes pour disperser le solvant dans l’eau.
3.4. PRÉPARATION DES ÉCHANTILLONS D’ORGANISMES MARINS
L’analyse des prélèvements d’organismes marins nécessite la constitution d’échantillons de chair selon les indications du chapitre XX, paragraphe 2.
4. CONSERVATION
Les échantillons d’eau peuvent être conservés avec leur premier solvant
d’extraction, dans les flacons d’échantillonnage, avant l’analyse finale en
laboratoire.
Les organismes marins sont placés dans des feuilles en papier d’aluminium et conservés congelés avant leur analyse. Après la lyophilisation on
peut également conserver les poudres obtenues pendant environ 1 mois, délai
qu'il n’est pas souhaitable de dépasser.
5. APPAREILLAGE
Appareillage commun :
. Evaporateur rotatif.
. Concentrateur sous jet d’air ou d’azote purifiés.
. Spectrofluorimètre équipé de cuves en quartz de 1 cm de trajet optique.
Matériel complémentaire pour l’eau de mer :
. Ampoules à décanter de 2 1.
. Flacons en verre de 200 ml.
. Eprouvettes de 100 ml.
. Tubes gradués de 15 ml.
Appareillage pour les organismes marins :
. Lyophilisateur et (ou) étuve.
. Extracteur Soxhlet ou homogénéiseur de type virtis.
. Centrifugeuse.
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