Préparation et stérilisation du matériel et des milieux de culture
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Tableau 16 (suite) ■ Principaux réactifs utilisés dans l'identification bactérienne.
Réactifs généraux
Réactifs Api1 3 bioMérieux" SA
Tests biochimiques
N, N, N, N-tétraméthyl1,4-phénylènediamine
Oxydase reagent
Oxydase
H2O2 (eau oxygénée)
ID color catalase
Catalase
Réactif de GriessIlosvay
NIT 1 (acide sulfanilique) + NIT 2
(N,N-diméthyl-1 -naphtylamine)2 3
Test nitrate-réductases
(formation des nitrites)
Poudre de zinc
Zinc
Test nitrate-réductases
(formation du diazote N,)
Zym A (Tris-hydroxyméthylaminométhane) + Zym B (Fast Blue
BB)3
Phosphatase alcaline
a-galactosidase
P-glucuronidase
P-galactosidase
Pyrrolidonyl arylamidase.
Leucine arylamidase...
FB (Fast Blue BB)3
Phosphatase alcaline,
Gamma Glutamyl
Transferase...
NIN (Ninhydrine)3
Hippurate
1. Correspondance entre les noms scientifiques des réactifs et les noms commerciaux.
2. Deux réactifs sont utilisés ici pour le test nitrate-rédutases.
3. Pour les compositions chimiques complètes (cf. bioMérieux SA).
2.4.
Classification des milieux de culture
D'un point de vue théorique, on peut classer les milieux de culture utilisés au
laboratoire, d’après leur composition chimique, en trois types principaux :
2.4.1. Milieux naturels ou empiriques
Ils ont une composition chimique complexe car ils contiennent des produits
d'origine végétale ou d’origine animale, qui sont mal définis.
2.4.1.1. Milieux à composants d’origine végétale
Carottes, pommes de terre, amidon, extrait de levures ou extrait de malt (orge
germé et séché) peuvent constituer, selon les cas. des milieux de culture pour les
micro-organismes ou être incorporés à ceux-ci ; leur utilisation est limitée et leur
rôle est spécifique.
► Milieu à la carotte (en tube de Roux)
i
Couper en deux dans le sens de la longueur des carottes fraîches épluchées ; intro! duire une demi-carotte dans un tube de Roux au fond duquel sera versée de I eau
) distillée pour maintenir un taux d'hygrométrie suffisant ; boucher avec un bouchon
en ouate de cellulose et stériliser à l'autoclave pendant 40 minutes à 105 C ;
:
Ce milieu naturel est favorable au développement de moisissures et de bactéries chromogènes.
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Tableau 16 (suite) ■ Principaux réactifs utilisés dans l'identification bactérienne.
Réactifs généraux
Réactifs Api1 3 bioMérieux" SA
Tests biochimiques
N, N, N, N-tétraméthyl1,4-phénylènediamine
Oxydase reagent
Oxydase
H2O2 (eau oxygénée)
ID color catalase
Catalase
Réactif de GriessIlosvay
NIT 1 (acide sulfanilique) + NIT 2
(N,N-diméthyl-1 -naphtylamine)2 3
Test nitrate-réductases
(formation des nitrites)
Poudre de zinc
Zinc
Test nitrate-réductases
(formation du diazote N,)
Zym A (Tris-hydroxyméthylaminométhane) + Zym B (Fast Blue
BB)3
Phosphatase alcaline
a-galactosidase
P-glucuronidase
P-galactosidase
Pyrrolidonyl arylamidase.
Leucine arylamidase...
FB (Fast Blue BB)3
Phosphatase alcaline,
Gamma Glutamyl
Transferase...
NIN (Ninhydrine)3
Hippurate
1. Correspondance entre les noms scientifiques des réactifs et les noms commerciaux.
2. Deux réactifs sont utilisés ici pour le test nitrate-rédutases.
3. Pour les compositions chimiques complètes (cf. bioMérieux SA).
2.4.
Classification des milieux de culture
D'un point de vue théorique, on peut classer les milieux de culture utilisés au
laboratoire, d’après leur composition chimique, en trois types principaux :
2.4.1. Milieux naturels ou empiriques
Ils ont une composition chimique complexe car ils contiennent des produits
d'origine végétale ou d’origine animale, qui sont mal définis.
2.4.1.1. Milieux à composants d’origine végétale
Carottes, pommes de terre, amidon, extrait de levures ou extrait de malt (orge
germé et séché) peuvent constituer, selon les cas. des milieux de culture pour les
micro-organismes ou être incorporés à ceux-ci ; leur utilisation est limitée et leur
rôle est spécifique.
► Milieu à la carotte (en tube de Roux)
i
Couper en deux dans le sens de la longueur des carottes fraîches épluchées ; intro! duire une demi-carotte dans un tube de Roux au fond duquel sera versée de I eau
) distillée pour maintenir un taux d'hygrométrie suffisant ; boucher avec un bouchon
en ouate de cellulose et stériliser à l'autoclave pendant 40 minutes à 105 C ;
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Ce milieu naturel est favorable au développement de moisissures et de bactéries chromogènes.