Chapitre I
Généralités
Page 12
1.6.2. Contrôle du développement algal
La croissance d’une culture est généralement exprimée comme étant l’augmentation d’une
biomasse, d’un nombre de cellule ou d’un taux de chlorophylle par unité de temps (in
BECHAGRA.A & al, 1997)
Il est utile, voir indispensable de contrôler régulièrement le développement algal afin de
déterminer le stade ou l’état physiologique, ce qui revient à déterminer la quantité des
micros algues. Pour cela, il existe plusieurs moyens d’évaluation quantitative des cellules
dans la culture.
Les méthodes d’évaluation de croissance peuvent être regroupées en:
1.6.2.1. Méthodes directes
- Par comptage ou numération au compteur de particules au microscope à l’aide d’une
cellule de comptage.
- Par mesure de leur volume cellulaire après centrifugation. La mesure est facilitée si le fond
des bols de centrifugation est long et étroit (LE BORGNE, 1978).
- Par le poids sec après centrifugation ou filtration d’un volume important, C’est précis pour
comparer les cultures entre-elle (M.FIALA, 1979), mais le processus est long et ne permet
pas un diagnostic rapide (JAQUE, 1978).
1.6.2.2. Méthodes indirectes
- Par mesure de la densité optique (Do), soit par mesure de la turbidité par photométrie ou de
la chlorophylle par un spectrophotométrie (M.FIALA, 1979); On peut établir une
correspondance entre la densité optique et la concentration cellulaire; une variation consiste
à mesurer la teneur en chlorophylle
(NEVEUX, 1978).
- Par mesure: des pigments, protéines, (ATP, CARBONE, Azote, etc.….).
Il est souvent nécessaire de connaitre les variations du nombre de cellules. Ces numérations
nécessitent des cellules ou des chambres de comptage.
Plusieurs types de celles ci existent, chacune d’elles fournissant une précision optimale pour
une taille de cellule et une concentration donnée (FIALA, 1978, AUDINEAU & al., 1986).
Le comptage s’effectue sous le microscope à l’aide d’une cellule de profondeur connue et
dont le quadrillage défini dans un volume déterminé.
Généralités
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1.6.2. Contrôle du développement algal
La croissance d’une culture est généralement exprimée comme étant l’augmentation d’une
biomasse, d’un nombre de cellule ou d’un taux de chlorophylle par unité de temps (in
BECHAGRA.A & al, 1997)
Il est utile, voir indispensable de contrôler régulièrement le développement algal afin de
déterminer le stade ou l’état physiologique, ce qui revient à déterminer la quantité des
micros algues. Pour cela, il existe plusieurs moyens d’évaluation quantitative des cellules
dans la culture.
Les méthodes d’évaluation de croissance peuvent être regroupées en:
1.6.2.1. Méthodes directes
- Par comptage ou numération au compteur de particules au microscope à l’aide d’une
cellule de comptage.
- Par mesure de leur volume cellulaire après centrifugation. La mesure est facilitée si le fond
des bols de centrifugation est long et étroit (LE BORGNE, 1978).
- Par le poids sec après centrifugation ou filtration d’un volume important, C’est précis pour
comparer les cultures entre-elle (M.FIALA, 1979), mais le processus est long et ne permet
pas un diagnostic rapide (JAQUE, 1978).
1.6.2.2. Méthodes indirectes
- Par mesure de la densité optique (Do), soit par mesure de la turbidité par photométrie ou de
la chlorophylle par un spectrophotométrie (M.FIALA, 1979); On peut établir une
correspondance entre la densité optique et la concentration cellulaire; une variation consiste
à mesurer la teneur en chlorophylle
(NEVEUX, 1978).
- Par mesure: des pigments, protéines, (ATP, CARBONE, Azote, etc.….).
Il est souvent nécessaire de connaitre les variations du nombre de cellules. Ces numérations
nécessitent des cellules ou des chambres de comptage.
Plusieurs types de celles ci existent, chacune d’elles fournissant une précision optimale pour
une taille de cellule et une concentration donnée (FIALA, 1978, AUDINEAU & al., 1986).
Le comptage s’effectue sous le microscope à l’aide d’une cellule de profondeur connue et
dont le quadrillage défini dans un volume déterminé.