Chapitre I :
Matériel et méthodes
17
5-Analyse du sédiment :
5.1.-Prétraitement des échantillons
Les échantillons prélevés ont été décongelés. On met chaque échantillon dans une boite de
pétrie étiquetée, puis on prend une quantité humide pour la mesure de la chlorophylle, le reste
de sédiment est séché à l’aide d’un étuve a 80°C pour l’estimation de la matière organique et
l’analyse granulométrique.
5.2-Analyse des échantillons
5.2.1-La chlorophylle a
Les mesures de la chlorophylle dans le sédiment sont réalisées avec la méthode décrite par
Steele et Baird (1968) in HAMDOUNI et HAMMAMOUCHE.,2008 , en apportant quelques modifications proposées par Riaux (1982) et Riaux-Gobin (1993) in HAMDOUNI et
HAMMAMOUCHE.,2008, au protocole de Plante–Cuny (1974).
Le sédiment est inséré dans un tube de 15 ml et 6 ml d'acétone 90 % sont ajoutés. Le tube est
agité.
L’extraction se réalise sur des sédiments humides (3 et 5 g approximativement respectivement
pour les faciès sableux et vaseux). La chlorophylle-a en solution aqueuse se dégrade
rapidement en présence de lumière et à la température ambiante.
Le rythme de dégradation peut être grandement réduit en conservant l’échantillon au froid et à
l’obscurité donc il faut éviter d’exposer l’échantillon trop longtemps à la lumière.
5.2.2-Mode opératoire
Mettre l’appareil (spectrophotomètre) en marche environ 30 minutes avant de procéder
aux dosages;
Sortir les échantillons du réfrigérateur ou du congélateur.
Éviter d’exposer les échantillons à la lumière et procéder le plus rapidement possible afin
de minimiser la dégradation de la chlorophylle a par la lumière et la chaleur.
L’échantillon est prêt pour passer au spectrophotomètre;
Remplir la cuvette du spectrophotomètre avec environ 5 ml de l’échantillon et mesurer
l’absorbance à 665 nm puis à 750 nm.
Acidifier les échantillons avec 2 gouttes de HCl 2 N/10 ml et prendre de nouveau une
lecture après 1 minute aux mêmes longueurs d’ondes.
La mesure de l’absorbance est effectuée avant acidification (mesure de la chlorophylle a)
Supprimé : ¶
Matériel et méthodes
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5-Analyse du sédiment :
5.1.-Prétraitement des échantillons
Les échantillons prélevés ont été décongelés. On met chaque échantillon dans une boite de
pétrie étiquetée, puis on prend une quantité humide pour la mesure de la chlorophylle, le reste
de sédiment est séché à l’aide d’un étuve a 80°C pour l’estimation de la matière organique et
l’analyse granulométrique.
5.2-Analyse des échantillons
5.2.1-La chlorophylle a
Les mesures de la chlorophylle dans le sédiment sont réalisées avec la méthode décrite par
Steele et Baird (1968) in HAMDOUNI et HAMMAMOUCHE.,2008 , en apportant quelques modifications proposées par Riaux (1982) et Riaux-Gobin (1993) in HAMDOUNI et
HAMMAMOUCHE.,2008, au protocole de Plante–Cuny (1974).
Le sédiment est inséré dans un tube de 15 ml et 6 ml d'acétone 90 % sont ajoutés. Le tube est
agité.
L’extraction se réalise sur des sédiments humides (3 et 5 g approximativement respectivement
pour les faciès sableux et vaseux). La chlorophylle-a en solution aqueuse se dégrade
rapidement en présence de lumière et à la température ambiante.
Le rythme de dégradation peut être grandement réduit en conservant l’échantillon au froid et à
l’obscurité donc il faut éviter d’exposer l’échantillon trop longtemps à la lumière.
5.2.2-Mode opératoire
Mettre l’appareil (spectrophotomètre) en marche environ 30 minutes avant de procéder
aux dosages;
Sortir les échantillons du réfrigérateur ou du congélateur.
Éviter d’exposer les échantillons à la lumière et procéder le plus rapidement possible afin
de minimiser la dégradation de la chlorophylle a par la lumière et la chaleur.
L’échantillon est prêt pour passer au spectrophotomètre;
Remplir la cuvette du spectrophotomètre avec environ 5 ml de l’échantillon et mesurer
l’absorbance à 665 nm puis à 750 nm.
Acidifier les échantillons avec 2 gouttes de HCl 2 N/10 ml et prendre de nouveau une
lecture après 1 minute aux mêmes longueurs d’ondes.
La mesure de l’absorbance est effectuée avant acidification (mesure de la chlorophylle a)
Supprimé : ¶