CHAPITRE III: Matériel et Méthodes
Estimation du taux de croissance journalier chez le rouget de vase : Mullus barbatus,
Linné (1758) dans la baie de Mostaganem
11
III. 3. Matériel utilisé :
Durant notre présente étude, nous avons utilisé un certain nombre de matériel de
laboratoire qu’on peut illustrer comme suivant selon la progression du travail :
-Un ichtyo-mètre gradué, des couteaux et bistouris de laboratoire, des petites pinces,
des lances de laboratoire, des sachets en plastiques pour le stockage des otolithes, des lames
de verre, une colle rapide (super glu), du papier verre de différents diamètres, des feutres
Magnet-Palf, de la fibre d’alumine (0,1 µm), de l’huile d’immersion, des loupes binoculaires,
des microscopes optiques et des appareils photos.
III. 4. Traitements aux laboratoires :
Apres l’échantillonnage, on procède à un certain nombre d’opérations et de
manipulations au laboratoire selon la procédure décrite par Kacher & Amara, (2005)
Les manipulations ont été réalisées, au laboratoire de biologie marine de l’ENSSMAL,
ainsi que le laboratoire de biologie et d’aquaculture de INSTPA (Institut National Supérieur
des Technique de Pèche et d’Aquaculture)
III. 4.1. Mensurations:
Cette étape consiste à mesurer, à l’aide d’un ichtyo-mètre gradué ; (Figure 6), les
tailles totales (Lt) des individus «Lt : la distance séparant l’extrémité de la bouche du poisson
a celle des deux lobes de la caudale ramenés l’un sur l’autre» à 0.1 mm pré selon la
description de Harchouche, (1988) in Babouri, (1990).
Estimation du taux de croissance journalier chez le rouget de vase : Mullus barbatus,
Linné (1758) dans la baie de Mostaganem
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III. 3. Matériel utilisé :
Durant notre présente étude, nous avons utilisé un certain nombre de matériel de
laboratoire qu’on peut illustrer comme suivant selon la progression du travail :
-Un ichtyo-mètre gradué, des couteaux et bistouris de laboratoire, des petites pinces,
des lances de laboratoire, des sachets en plastiques pour le stockage des otolithes, des lames
de verre, une colle rapide (super glu), du papier verre de différents diamètres, des feutres
Magnet-Palf, de la fibre d’alumine (0,1 µm), de l’huile d’immersion, des loupes binoculaires,
des microscopes optiques et des appareils photos.
III. 4. Traitements aux laboratoires :
Apres l’échantillonnage, on procède à un certain nombre d’opérations et de
manipulations au laboratoire selon la procédure décrite par Kacher & Amara, (2005)
Les manipulations ont été réalisées, au laboratoire de biologie marine de l’ENSSMAL,
ainsi que le laboratoire de biologie et d’aquaculture de INSTPA (Institut National Supérieur
des Technique de Pèche et d’Aquaculture)
III. 4.1. Mensurations:
Cette étape consiste à mesurer, à l’aide d’un ichtyo-mètre gradué ; (Figure 6), les
tailles totales (Lt) des individus «Lt : la distance séparant l’extrémité de la bouche du poisson
a celle des deux lobes de la caudale ramenés l’un sur l’autre» à 0.1 mm pré selon la
description de Harchouche, (1988) in Babouri, (1990).