Matériel et méthodes
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2.2. Matériel expérimental
Le matériel utilisé dans le protocole expérimental figure sur l’annexe 2.
3. Protocole expérimental
3.1. Conditionnement et marquage des géniteurs
Nous avons utilisé trois bacs pour la stabulation des géniteurs femelles de mêmes
dimensions (1,20 m x 1 m x 0.8 m) et chacun des bacs contient un thermostat et une
pompe d'aération immergée (fig. 14). Afin d'éviter tout risque d'infection, les bacs sont
soigneusement nettoyés avant l'installation des géniteurs à l'intérieur.
Après préparation des bacs, nous avons pêché à l'aide d'un filet trois géniteurs femelles à
partir d’un bassin de stockage, en rabattant les géniteurs dans un coin puis en les
ramassant à l'épuisette (fig. 15).
Les géniteurs pêchés sont placés directement dans un bain d’anesthésie, l’anesthésiant
utilisé est le phénoxyéthanol à une concentration variant entre 0.1 et 0.5 ml/l d’eau
(Billard, 1995 et Nguenga, 1996). À la concentration de 0.36 ml/l, les poissons sont
complètement anesthésiés au bout de quelques minutes (fig. 16).
Nous avons marqué deux femelles à l’aide de deux fils de différentes couleurs attachés
au niveau de la nageoire dorsale (fig. 17) ; la troisième a été laissée sans marquage. Le
pesage des géniteurs a été effectué à l’aide d’une balance électronique de marque KERN
® Type 572 (6500g max, d = 0.1g). Ensuite, chaque femelle a été placée
individuellement dans un bac de stabulation (muni d’un couvercle pour que la femelle
ne saute pas) pendant 3 heures. Le marquage et le poids de chaque individu sont
consignés sur le cahier de suivi.